分子克隆技巧简介

分子克隆技巧简介

分子克隆是分子生物学中用于组装重组DNA分子的一组实验方法。

基于质粒的克隆包括 4 个主要步骤:

  • 插入 DNA 制备

  • 载体DNA制备

  • 插入片段与载体的连接

  • 转化为感受态细胞

在下面的示例中,我们将描述如何使用 SgfI 和 MluI 将目标插入片段亚克隆到载体中。
分子克隆技巧简介

插入 DNA 制备

  1. 对含有插入片段的载体进行限制性消化

    1. 用相应的限制性内切酶消化含有插入片段的载体 DNA。对于我们的示例,使用的限制性位点是 SgfI 和 MluI 位点。 OriGene 拥有全基因组 cDNA 表达载体

    2. 在琼脂糖凝胶上运行消化的插入 DNA 以检查大小并进行凝胶内纯化。
      OTI-TIP:在琼脂糖凝胶上运行纯化的消化插入片段以确认浓度。浓度将进一步有助于建立连接。

  2. 从模板进行 PCR 扩增

    如果无法用兼容的限制性位点切割插入片段,则可以使用 PCR 来扩增插入片段,使其具有目标序列侧翼的所需克隆位点。

    1. 设计包含目标序列侧翼所需克隆位点的引物。免费的在线软件程序可用于设计引物。如果手动设计,我们建议最小长度约为20bp,GC含量为40-60%,Tm为60-65°C。

    2. 通过 PCR 扩增模板中的插入 DNA。使用 PCR 纯化试剂盒纯化产物。

    3. 用限制性内切酶消化 PCR 产物。在琼脂糖凝胶上运行消化的 PCR 并纯化正确大小的 PCR 带。
      OTI-TIP:在琼脂糖凝胶上运行纯化的 PCR 插入片段以确认浓度。浓度将进一步有助于建立连接。

载体DNA制备

  1. 选择适合您的包含多个克隆位点 (MCS) 的克隆载体。 OriGene 拥有超过120 种哺乳动物表达载体,包括病毒和非病毒形式
    如果需要更多的载体DNA,可以使用热休克或电穿孔方法转化至大肠杆菌感受态细胞,例如DH5 alpha。

  2. 用与插入序列(例如 SgfI 和 MluI 位点)兼容的限制性酶消化 3-5 ug 载体。将限制性消化酶在 37°C 下孵育 1 小时。
    OTI-TIP:可能需要更长的孵育时间以确保载体全消化,但不要超过 3 小时。
    OTI-TIP:为防止载体自连接,请用碱性磷酸酶在 37°C 下将消化载体的 5' 末端去磷酸化 30 分钟。

  3. 为了减少未切割的载体质粒背景,我们建议在琼脂糖凝胶上运行消化的载体,然后纯化线性载体。
    OTI-TIP:在琼脂糖凝胶上运行纯化的消化载体以确认浓度。浓度将进一步有助于建立连接。

结扎

  1. 为了成功连接,您可以使用载体:插入片段摩尔比为 1:3。
    OTI-TIP: 1:1 和 1:10 之间的载体:插入片段比例也可用于进一步优化连接反应。

  2. 要确定自连接产生的任何背景克隆,请设置不含插入 DNA 的对照连接。

  3. 在 16 oC 下孵育过夜(或根据连接试剂盒中的方案)。

转型

  1. 通过电穿孔或热休克方法将 1-2 uL 连接反应转化至大肠杆菌感受态细胞中。
    OTI-TIP:如果插入片段有毒或不稳定,则可以使用专门允许这些插入片段成功扩增的感受态细胞。

  2. 转移至 SOC 培养基中以复活转化的细胞。在 37°C 下搅拌 SOC 介质 1-2 小时。

  3. 将混合物接种到装有抗生素平板的 LB 上,并在 37°C 下孵育过夜。
    OTI-TIP:对于某些有毒插入物,可能需要较低的温度和较长的孵育时间。较小的菌落可能是正确的克隆。

  4. 筛选带有目标插入序列的质粒的集落。通过消化、PCR 扩增和测序确认

常见蛋白质印迹问题的提示和技巧

常见蛋白质印迹问题的提示和技巧

蛋白质印迹是研究实验室普遍使用的一种技术,用于研究感兴趣的蛋白质。蛋白质印迹用于抗体验证、蛋白质-蛋白质相互作用研究以及许多其他应用。1然而,生成可解释的蛋白质印迹结果可能具有挑战性。以下是一些常见问题以及解决方法。

高背景

可能是由于 尝试这个
高抗体浓度 使用一抗和二抗进行滴定。包括已知的蛋白质对照。
封闭液 使用新鲜的封闭液,增加封闭时间/温度,尝试不同的封闭剂。
印迹在封闭/洗涤过程中干燥 确保膜在封闭和清洗步骤中被充分覆盖。
洗得不够 增加洗涤次数和洗涤液体积。确保至少洗涤 3 次,每次 5 分钟。
胶片曝光过度 尝试较短的曝光时间。

没信号

可能是由于 尝试这个
抗体浓度太低 使用一抗和二抗进行滴定。包括已知的蛋白质对照。
样品中目标含量低 增加凝胶上的蛋白质浓度。建议滴定。
一抗和二抗不匹配 确保二抗针对一抗的宿主物种。
转移问题 使用带有颜色的蛋白质标记来检查转移。使用对照蛋白优化转移。转移前检查是否有气泡。
洗次数太多 减少洗涤次数。

多频段

可能是由于 尝试这个
凝胶超载 滴定加载在凝胶上的蛋白质样品。
使用过多抗体 使用一抗和二抗进行滴定。包括已知的蛋白质对照。
胶片曝光过度 尝试较短的曝光时间。
阻塞问题 使用新鲜的封闭液,增加封闭时间/温度,尝试不同的封闭剂。
目标蛋白的翻译后修饰 研究发表了目标蛋白翻译后修饰的例子,可以提供生物学解释(即磷酸化、糖基化、核糖基化)。
翻译后裂解 许多蛋白质被合成为前蛋白质,然后被切割成活性形式,例如前半胱天冬酶。研究针对您的目标发布的示例。
拼接变体 选择性剪接可能会产生由同一基因产生的不同大小的蛋白质。研究针对您的目标发布的示例。

抗原修复技术技巧有哪些?

抗原修复技术技巧有哪些?

对于特定抗体,我应该使用哪种抗原修复方法

一些公司测试其抗体的免疫组织化学应用,并将在数据表中包含建议的 抗原修复方法(注意:一些建议的方法不是最佳的)。如果以上都没有给您明确的答案,则需要进行测试。

 

如何使用各种抗原修复方法对新抗体进行测试

最初,您可能想要测试 HIER 中的两种方法,例如 柠檬酸盐缓冲液 (pH 6)和 Tris-EDTA (pH 9),以及 PIER 中的一种或两种方法,例如 蛋白酶 K和/或 胰蛋白酶。这应该会给您一个很好的机会获得特定抗体的最佳抗体。

 

我用各种抗原修复方法测试了我的抗体 ,但仍然没有结果

该抗体可能不适合福尔马林固定、石蜡包埋的组织(某些抗体仅适用于冰冻切片),或者该抗体有问题(过期或损坏),您可能需要改用其他抗体。

 

在热诱导表位修复 (HIER) 方法中,哪一种比较好

柠檬酸盐缓冲液(pH 6)法是常用的方法之一。一些研究表明 Tris-EDTA (pH 9)或 Tris-HCl (pH 10) 更佳。测试可能是了解哪种抗体适合特定抗体的最佳方法。

 

使用HIER进行预处理时需要考虑哪些关键因素

(1) 修复液温度应在95℃左右。

(2)孵育时间至少10分钟,一般20分钟左右。

(3) 修复液的pH值取决于您所使用的溶液。

 

在蛋白水解酶诱导表位修复 (PIER) 方法中,哪一种比较好

蛋白酶 K似乎是常用的一种。浓度、孵育时间和温度可能是需要考虑的更重要的因素。同样,测试是了解哪种抗体适合特定抗体的最佳方法。

 

使用PIER进行预处理时需要考虑哪些关键因素

(1) 酶的浓度通常为 0.05-0.1%,具体取决于组织和固定的类型。

(2)孵育时间可为5-30分钟,常用10-15分钟。

(3)孵化温度通常为37 

 

冰冻切片是否需要进行抗原修复:新鲜冰冻切片的免疫染色不需要进行抗原修复。因为抗原修复是破坏福尔马林固定形成的交联,将新鲜冰冻切片切片并用冰冷的丙酮固定5-10分钟。

磁珠的使用技巧

磁珠的使用技巧

纯化是大多数分子生物学实验中的常见程序,例如去除 PCR 反应中的短引物、未掺入的 dNTP、酶和盐以及其他杂质。纯化方法有多种,包括过滤、离心和分离。分离已成为生命科学中非常流行的方法,并使用各种类型的固相支持物。这包括琼脂糖珠、琼脂糖珠、二氧化硅珠和磁珠。使用磁珠分离是所有磁珠分离方法中最快、最干净且有效的技术。

磁珠可以涂有针对抗原、抗体、蛋白质或核酸的特异性亲和配体。将磁珠与样品一起孵育后,对磁珠(和附着的生物分子)施加磁力,以将磁珠收集成浓缩颗粒。分离完成后,可以轻松去除上清液,并且可以从磁珠上洗脱与珠子结合的生物分子。

使用磁力操纵磁珠的能力使得洗涤步骤比使用琼脂糖、琼脂糖凝胶或硅珠更容易和更快。纯化的产物还可以使用磁力分离方法以更浓缩的形式回收。

以下是给新用户的一些提示:

1.       重悬珠子

磁珠需要有足够的磁性含量,以便可以通过磁铁简单地下拉。传统磁珠的尺寸超过 1 µm (1 µm = 1000nm)。较新的珠子尺寸更小(低至数百纳米),以增加珠子表面积。这导致结合能力增加并改善分散性。磁珠是由氧化铁组成的重颗粒,因此它们会随着时间的推移而沉淀。珠子的尺寸越大,沉淀得越快。使用前涡旋并重悬磁珠非常重要,以重新分散磁珠并确保等分试样之间的一致性。

2.       清洗珠子

增加洗涤步骤的数量有助于减少与磁珠的非特异性结合。用乙醇(用于核酸纯化)或洗涤缓冲液洗涤磁珠时,请使用足够的洗涤溶液覆盖沉淀。

3.       了解珠子的特性

磁珠有不同的尺寸、形状、磁响应、涂层、缓冲条件和附着的官能团。这些变量影响珠子的特性。获取珠子的基本信息对于更好地了解如何处理它们非常重要。

4.       捕获珠子

一般来说,磁珠会被磁铁吸引并在一分钟内形成颗粒。延长磁珠对磁铁的吸引力,以确保所有磁珠均被回收。

5.       去除洗涤液时不要扰动珠粒

去除洗涤液或上清液时,倾斜移液器吸头,使吸头不接触磁珠沉淀。这可以防止珠子与上清液重新混合。使用具有倾斜侧面的磁力架,使珠粒集中在管壁的一侧。这使得去除上清液变得更加容易。

elisa试剂盒操作中的小技巧

elisa试剂盒操作中的小技巧    elisa试剂盒是一种免疫学技术,用于检测和测量特定蛋白质,如生物样品中的抗体、抗原和激素等。ELISA是以免疫学反应为基础,将抗原牵9体的特异性反应与酶对底物的高效催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。由于抗原抗体的反应在一种固相载体-聚苯乙烯微量滴定板的孔中进行,每加入一种试剂孵育后,可通过洗涤除去多余的游离反应物,从而保证试验结果的特异性与稳定性。

  在实际应用中,通过不同的设计,具体的方法步骤可有多种。即用于检测抗体的间接法用于检测抗原的双抗体夹心法以及用于检测小分子抗原或半抗原的抗原竞争法等等。
  
  elisa试剂盒操作中的小技巧:
  1、操作前应对实验的物理参数有充分的了解,如环境温度(保持在18C~25℃)、反应孵育温度和孵育时间、洗涤的次数等,要先查看水育箱温度,是否符合要求。
  2、正确使用加样器加样器应垂直加入标本或试剂,避免刮擦包被板底部。加样过程中避免液体外溅,血清残留在反应孔壁上,加样器吸头要清洗干净,避免污染,加样次序要与说明书一致,否则可导致结果错误,实验重复性差。
  3、手工洗板加洗液时冲击力不要太大,洗涤次数不要超过说明书推荐的洗涤次数,洗液在反应孔内滞留的时间不宜太长。不要使洗液在孔间窜流,造成孔问污染,导致假阴性或假阳性。
  4、要保证加液量一致,我们在使用时感觉滴瓶加液不如加样器好,滴瓶不易控制加液量不准,造成显色不统一,判断错误。
  5、显色液量不可过多加样的工作环境不能处于阳光直射的环境下,加显色系统后要避光反应,显色液量不能过多,以免显色过强。
  试剂应妥善保存于4℃冰箱内,在使用时先平衡至室温,不同批号的试剂组分不宜交叉使用。试剂开启后要在一周内用完,剩余的试剂下次用时应先检查是否变质,显色剂如被污染变色将造成全部显色,导致错误结果。

干货!elisa试剂盒实验中的小技巧

干货!elisa试剂盒实验中的小技巧    elisa试剂盒以灵敏度较高、特异性较好的特点在上得到了广泛的应用,试剂盒的影响因素应选用有国家批准文号,质量靠得住的产品,不能图便宜,忽视质量保证。试剂应妥善保存于4℃冰箱内,在使用时先平衡至室温,不同批号的试剂组分不宜交叉使用。试剂开启后要在一周内用完,剩余的试剂下次用时应先检查是否变质,显色剂如被污染变色将造成全部显色,导致错误结果。

  
  下面的文章中小编为大家讲述一些ELISA实验中的小技巧,希望对大家有所帮助:
  1、操作前应对实验的物理参数有充分的了解,如环境温度(保持在18C~25℃)、反应孵育温度和孵育时间、洗涤的次数等,要先查看水育箱温度,是否符合要求。
  2、正确使用加样器加样器应垂直加入标本或试剂,避免刮擦包被板底部。加样过程中避免液体外溅,血清残留在反应孔壁上,加样器吸头要清洗干净,避免污染,加样次序要与说明书一致,否则可导致结果错误,实验重复性差。
  3、手工洗板加洗液时冲击力不要太大,洗涤次数不要超过说明书推荐的洗涤次数,洗液在反应孔内滞留的时间不宜太长。不要使洗液在孔间窜流,造成孔问污染,导致假阴性或假阳性。
  4、要保证加液量一致elisa试剂盒我们在使用时感觉滴瓶加液不如加样器好,滴瓶不易控制加液量不准,造成显色不统一,判断错误。
  5、显色液量不可过多加样的工作环境不能处于阳光直射的环境下,加显色系统后要避光反应,显色液量不能过多,以免显色过强。