hellobio免疫组织化学 (IHC) 实验组织准备

hellobio免疫组织化学 (IHC) 实验组织准备

高质量的组织制备对于高质量的免疫组织化学结果绝对必要,因此始终值得花时间确保按照尽可能高的标准进行,以避免令人失望的结果。根据实验要求,组织可能需要新鲜使用或固定。

 

1 冷冻组织以供后续处理

有时需要在进一步处理或随后的固定之前冷冻组织。如果冷冻不当,可能会形成冰晶,损害细胞结构。通过正确冷冻,这将保持组织的质量,从而最大限度地提高免疫染色成功的机会。

1. 将装有异戊烷的烧杯(长烧杯中至少 500ml)在 -80°C 中或使用干冰预冷至 -42°C 至 -45°C 之间。定期监测温度以确保温度保持在这个范围内。

2. 在冰上使用干净的工具解剖组织。

3. 将纸巾放在铝箔上,并用滤纸除去多余的液体。

4. 将组织(不含铝箔)轻轻浸入异戊烷中。冷冻所需时间取决于组织样本大小,但冷冻成年大鼠大脑大约需要 5 分钟。

5. 在从异戊烷中取出组织之前,预冷镊子。将冷冻组织放入装有软纸巾的预冷管中。

6. 储存于-80°C 直至下次使用。

2 灌注固定

一般来说,当动物被灌注固定时,可以获得最佳质量的组织切片。该过程涉及先用缓冲液然后用固定剂替换血液,并且其具有高自发荧光。在尝试之前,请确保您的监管制度涵盖了这一点,并获得经验丰富的从业人员的培训。针对啮齿类动物的一般方案是:

1. 通过适当途径过量注射麻醉剂,直至动物没有脚趾捏和眨眼反射但心脏仍在跳动。

2. 打开胸腔,露出心脏,剪断右心房。将针插入左心室,并通过冰冷的 PBS(大鼠约 200ml,小鼠约 15ml)灌注,然后灌注类似体积的 4% 多聚甲醛的 PBS 溶液。

3. 取出大脑/其他器官,放入装有 4% 多聚甲醛的小瓶中,在 4°C 下放置 24 小时。

4. 将组织移入 4°C 含 30% 蔗糖的 PBS 中,直至组织沉入小瓶底部

3 浸入固定

对于小体积的组织,通常用固定剂孵育组织就足够了,而不是使用灌注固定。然而,这将导致较高的背景,因为血液不会从小毛细血管中去除。

1. 在冰上用干净的工具解剖组织。

2. 用冰冷的 PBS 短暂清洗

3. 将组织放入含 4% 多聚甲醛的 PBS 中,4°C 下放置 24 小时

4. 将组织移入 4°C 含 30% 蔗糖的 PBS 中,直至组织沉入小瓶底部

4 切片

可以在一系列机器上切割切片,最常见的是低温恒温器和冷冻切片机。机器的选择部分取决于可用性,部分取决于需要切割多厚的部分。检查可用机器的规格是否与所需的截面厚度相匹配。

对于载玻片免疫组织化学,切片可以直接切割到显微镜载玻片上,或者切割到 PBS 中,用于自由浮动免疫组织化学。

切割后,切片可以冷冻以供日后处理:

  • 载玻片安装:让切片干燥后,切片可在 -20°C 至 -80°C 下保存长达一年

  • 自由浮动 将切片转移至冷冻保护剂中,然后在 -20°C 下保存长达一年。

免疫组织化学 (IHC) 故障排除

免疫组织化学 (IHC) 故障排除

免疫组织化学是一个漫长的多步骤过程,可能会出现很多问题,并且实验成功需要考虑很多因素。在某些时候,不可避免地会出现问题或不是最佳状态。下面汇总了一些可能导致免疫组织化学结果欠佳的最常见陷阱。

问题

潜在原因

建议的解决方案

弱染色或无染色


 


 

抗体浓度过低

  • 尝试增加一抗浓度

  • 考虑使用使用生物素化二抗的扩增系统

抗体不相容性

  • 确保二抗与一抗的物种和抗体亚类兼容

高背景会模糊信号

  • 请尝试遵循下面本故障排除指南的“高背景或非特异性染色”部分中详细介绍的建议。

膜被透化试剂损坏

  • 尝试使用较低浓度的清洁剂。

  • 尝试使用较弱的清洁剂(例如用 Triton X-100 代替 Tween-20)

抗体不适合 IHC

  • 有些抗体不适合 IHC 中抗原的呈现方式。检查数据表,了解之前是否已在 IHC 或 ICC 中进行过测试,如果没有,请考虑使用不同的抗体。

  • 尝试使用不同的固定方法,该方法将以不同的方式呈现抗原,因此可能允许抗体结合。

目标蛋白丰度低

  • 尝试增加一抗浓度

  • 尝试使用放大方法,例如生物素化二抗

固定可能会掩盖目标表位

  • 尝试第 5.2 节中描述的抗原修复方法之一

抗体对组织切片的渗透性较差

  • 尝试将抗体孵育更长时间或以更高的浓度

  • 尝试使用更薄的组织切片

  • 尝试使用较小的一抗(例如使用 IgG 而不是 IgM)

通透性不足

  • 尝试增加缓冲液中 Triton-X100 的浓度。

  • 如果使用 Tween-20,请考虑改用 Triton-X100,这是一种更强的清洁剂。

与检测系统使用不兼容的二级荧光团

  • 仔细检查所使用的显微镜系统是否具有适合所使用荧光团的正确激发和发射滤光片。

  • 考虑使用不同的荧光团偶联二抗。几乎所有荧光显微镜至少都配备滤光片组,能够对 DAPI 和 FITC / Alexa Fluor 488 / Dylight 488 进行成像。

安装后荧光团降解

  • 免疫荧光切片封片后 2 天内对切片进行成像。

缓冲区退化

  • 使用前检查缓冲液的 pH 值

  • 警惕细菌生长的迹象,一旦发现就扔掉。

  • 必要时新鲜制作。

降解的一抗

  • 确保抗体在制造商提供的最佳使用日期内。

  • 考虑将来分装抗体,快速冷冻,然后储存在 -80°C 下,以避免抗体降解的风险。

由于光漂白而损坏荧光团共轭二抗

  • 确保使用荧光团共轭二抗时执行的所有步骤都是在弱光或黑暗中进行

  • 成像时尽量使用尽可能低的照明来捕获最佳图像。这对于共焦显微镜尤其重要,因为高激光功率设置可以极快地漂白一些荧光团。

  • 考虑使用比 FITC 或 TRITC 等旧化合物更耐漂白的荧光团。

不兼容的缓冲区

  • 一些抗体在基于 TBS 的缓冲液中表现更好,而其他抗体则更喜欢 PBS。尝试更换缓冲液,看看这是否会增加染色。 

过度固视

  • 尝试减少组织与固定剂一起孵育的时间。

  • 考虑尝试替代固定液

多路复用时在通道之间渗透

重叠的荧光团激发/发射光谱

  • 尝试使用重叠有限的荧光团对(例如DAPI、Alexa Fluor 488 和 Alexa Fluor 594)

  • 使用光谱分析工具(例如FPbase Spectraviewer确保荧光团对之间的重叠有限。

  • 尝试使用单一抗体对照,看看一个通道中的信号是真实的还是只是由于渗漏所致。

  • 一些先进的图像分析软件具有可以(在一定程度上)校正渗色的功能。

成像系统上的激发和发射滤光片不合适

  • 检查荧光团和滤光片之间的兼容性,以确保每个滤光片仅捕获荧光团。

  • 对于共焦显微镜,请考虑收紧允许进入检测器的光波长窗口并使用测序,以便每个荧光团只有一个激光处于活动状态。

组织形态改变

冰伤害

  • 确保在未来的实验中按照既定方案(例如本文件中列出的方案)冷冻组织。将组织切片放入 30% 蔗糖中时,确保组织已全沉没,否则蔗糖可能没有足够的时间扩散到组织中。

  • 考虑在分析中引入损伤评分系统,以评估冰损伤是否影响实验结果。 

自由浮动部分的粗暴处理

  • 使用网等设备可以帮助减少整个协议中组织切片所需的处理量。

  • 使用优质细画笔拾取和移动部分。确保没有被低温恒温器/切片机刀片降解。

  • 安装自由浮动部分时,尽量避免接触部分,而是使用刷子飘到载玻片上。

因储存不当而降解

  • 如果保存不当,切片可能会被微生物生长污染。考虑使用 0.05% 叠氮hua钠来防止储存溶液或冷冻切片中的生长

抗原修复过于苛刻

  • 考虑将抗原修复方法改为不太苛刻的方法

冰冻切片从载玻片上脱落

  • 确保始终对载玻片进行处理,以确保切片更有效地粘贴。虽然有商业品种,但可以按照CSH 协议等既定协议在实验室中对载玻片进行替换; 

固定不佳

  • 不全固定会导致组织迅速降解。尝试增加组织与固定剂一起孵育的时间或考虑增加固定剂的浓度。

高背景或非特异性染色


 

组织切片中的自荧光分子

  • 如果组织尚未灌注,请考虑在下一个实验中进行,因为剩余的红细胞会产生强烈的自发荧光。

  • 自发荧光可能是由固定剂引起的。尝试使用不同的固定剂。

  • 确保 NaBH 4是新鲜制备的

  • 尝试用淬灭荧光的染料(例如,Pontamine 天蓝、苏丹黑或台盼蓝)孵育切片。

  • 尝试使用与自发荧光波长不同的荧光团(例如红移染料,如 Alexa Fluor 680) 

非特异性二次结合

  • 运行无初级对照以评估次级对照是否与组织切片结合。

  • 如果一抗与组织来自同一物种,这可能会导致重大问题。请参阅本协议或考虑使用不同种类的一抗。 

一抗浓度过高

  • 尝试降低一抗浓度

二抗浓度过高

  • 尝试降低二抗的浓度。我们发现 1:300 至 1:500 的稀释度是一个不错的起点。

抗体纯化不充分

  • 未纯化的多克隆抗体可能含有与一系列非靶蛋白发生交叉反应的抗体。检查数据表;理想情况下,应使用免疫原作为诱饵,通过亲和层析纯化多克隆抗体。 

  • 虽然单克隆抗体的问题较少见,但仍应至少使用 Protein A 或 G 亲和层析进行纯化。

  • 如果有其他替代品,请考虑改用更好的纯化抗体,或者如果没有其他替代品,请考虑内部纯化抗体。  

阻挡不足

  • 确保封闭血清与培养二抗的物种相同。

  • 尝试使用不同的阻塞解决方案。

  • 尝试增加封闭步骤的长度或增加血清浓度

洗涤不足

  • 尝试增加洗涤的时间和/或次数。

  • 确保洗涤期间有足够的搅拌,以帮助未结合的抗体扩散出组织

一抗与组织切片来自同一物种。

  • 运行无初级对照以评估次级对照是否与组织切片结合。

  • 如果一抗与组织来自同一物种,这可能会导致重大问题。请参阅本协议第 4.3 节或考虑使用不同种类的一抗。

内源酶活性(用于显色检测)

  • 尝试用特定抑制剂阻断内源酶活性。

对于 HRP 结合二抗,使用 0.3% H 2 O 2 10-15 分钟。如果在此浓度下封闭不成功,请考虑增加至 3%。 

对于 AP 结合二抗,请使用 2mM 左旋咪唑。 

 

部分已经干了

  • 确保切片始终保持湿润,并在加湿室中使用载玻片安装方案进行长时间孵育。

底物过多(用于显色检测)

  • 尝试降低底物浓度或孵育时间。

信号放大率过高(如果使用生物素化二抗)

  • 尝试降低扩增试剂或二抗的浓度。

  • 考虑信号放大是否必要或者标准方法是否有效。

组织切片厚度

  • 组织切片越厚,宽视野显微镜中的散射光越多。尝试使用更薄的开关部分或共焦显微镜。

免疫组织化学故障排除

免疫组织化学故障排除

弱染色或无染色

 

来源

解决方案

脱蜡不充分 延长切片脱蜡时间或更换新鲜二甲苯
无活性的一抗 更换新一批抗体
由于储存不当,抗体无法发挥作用 将抗体分装成较小的体积并储存在冰箱中(-20 至 -70°C),并避免重复冻融循环。或根据制造商的说明储存抗体。
抗体浓度太低 增加一抗和/或二抗的浓度。或者运行连续稀释测试以确定提供最佳信噪比的最佳稀释度
抗体 孵育时间不足 增加抗体 孵育时间
组织固定不充分或不正确 增加后固定时间或尝试不同的固定剂
组织过度固定 减少后固定的持续时间。如果组织已经过度固定,请执行适当或推荐的抗原修复程序。
二抗和一抗不相容 使用可与一抗相互作用的二抗。例如,如果一抗是从兔子中产生的,则使用抗兔二抗
无活性二抗 更换新一批抗体
无活性 ABC 试剂 更换新一批试剂
酶底物 系统有缺陷或不相容 更换新一批试剂
底物孵育时间不足 增加底物孵育时间
封固剂不正确 选择正确的封固剂
试剂使用顺序错误或步骤省略 检查注释或使用的程序

 

过度染色

 

来源

解决方案

一抗和/或二抗浓度过高 降低抗体浓度或进行滴定以确定一抗和二抗的最佳稀释度
孵化时间太长 减少孵化时间
孵化温度太高 降低孵化温度
底物 孵育时间太长 减少底物孵育时间
切片变干 避免切片变干

 

高背景

 

来源

解决方案

切片清洗不充分 步骤之间至少清洗 3 次
组织含有内源性酶,例如过氧化物酶或碱性磷酸酶 在孵育一抗之前,使用甲醇或左旋咪唑溶液(阻断 AP)中的 3% 过氧化氢(阻断过氧化物酶)阻断内源酶活性。
组织含有内源性生物素活性 在孵育一抗之前,使用亲和素/生物素封闭试剂封闭内源生物素活性。
一抗与组织非特异性结合或抗体浓度过高 使用较高稀释度的一抗可以减少非特异性结合
二抗与组织的非特异性结合 用来自同一物种的正常血清作为二抗处理组织。
二抗与类似物种的组织发生交叉反应,即兔抗大鼠 IgG 可能与小鼠组织发生交叉反应。 使用预吸附的第二抗体,即在小鼠组织上使用兔抗大鼠IgG,小鼠吸附,或在大鼠组织上使用兔抗小鼠IgG,大鼠吸附。
由于固定不充分导致组织抗原扩散 增加后固定时间
用于小鼠组织的小鼠抗体 一抗孵育前用 MouseOnMouse 封闭试剂处理组织

切片变干

避免切片变干

免疫组织化学 (IHC) – 实验方案

免疫组织化学 (IHC) – 实验方案

免疫组织化学是免疫染色在组织学中的重要应用。它需要使用与生物组织中的这些抗原结合的抗体来特异性检测细胞中的抗原。组织样本通过石蜡包埋或福尔马林固定方法固定,并用抗原修复剂进行预处理。预处理对于通过破坏福尔马林诱导的抗原交联来改善抗原的表达至关重要。然后封闭载玻片以减少背景,并可以通过直接标记或间接测定进行染色。

免疫组织化学 (IHC) – 实验方案

脱蜡

  1. 将载玻片在 60°C 孵育 60 分钟。

  2. 在二甲苯中脱蜡 10 分钟,然后再重复一次。

  3. 在 100% 酒精中水合 5 分钟,然后在 95% 酒精中水合 5 分钟,然后在 85% 酒精中水合 5 分钟,然后在 75% 酒精中水合 5 分钟。

  4. 浸入蒸馏水中5分钟

  5. 浸入 TBS(50 mM Tris、100 mM NaCl、pH 7.6)中,放置 5 分钟,然后重复两次。

抗原修复

  1. 将 500-2000 ml 10 mM 柠檬酸盐缓冲液 (pH6.0) 在不锈钢高压锅中煮沸。

  2. 将载玻片放入染色架中,然后放入高压锅中,确保载玻片充分浸入柠檬酸盐缓冲液中。

  3. 3-4 分钟后,当压力指示阀上升时,孵育 1 分钟。

  4. 将载玻片自然冷却至室温。

  5. 浸入蒸馏水中,放置 5 分钟,重复两次。

  6. 将载玻片浸入 TBS 中 5 分钟,然后重复两次。

  7. 在室温下将载玻片浸入 3% H2O2(新鲜甲醇中)15 分钟。

  8. 用蒸馏水清洗两次,每次5分钟。

  9. 用TBS(pH 7.6)洗涤两次,每次5分钟。

一抗染色

  1. 用 TBS 中的 3% BSA 稀释一抗。用稀释的一抗覆盖载玻片上的组织切片(每张载玻片使用 50-150 μl)。

  2. 37℃孵育30分钟或室温60分钟(最佳孵育时间、孵育温度和抗体稀释度应由各个实验室确定)。

  3. 用TBS洗涤两次,每次5分钟。

二抗染色

  1. 与 100-200μl 聚合物增强剂一起孵育 37C 孵育 30 分钟

  2. 用TBS洗涤3次,每次5分钟。

  3. 与 100 200μl 聚合 HRP 一起孵育,并在 37C 下孵育 30 分钟

  4. 用TBS洗涤3次,每次5分钟。

  5. 加入dAb溶液,孵育3-10分钟(反应进度和最佳时间应根据显微镜确定)。

  6. 用蒸馏水清洗2次,每次5分钟。

  7. 如果需要,用苏木精复染切片,用蒸馏水清洗。将玻片浸入 0.1% HCl 乙醇中 1-10 秒,用蒸馏水清洗。

  8. 95%乙醇脱水1分钟,100%乙醇脱水2×3分钟,二甲苯脱水2×3分钟,盖玻片封固剂。

免疫组织化学工作流程

免疫组织化学工作流程

VECTASTAIN ®  ABC 系统使我们成为免疫组织化学 (IHC) 和免疫细胞化学 (ICC) 领域的先驱,并且我们在这些领域仍然是值得信赖的品牌。我们的产品因其高灵敏度、低背景、可靠性、再现性和价值定价而受到好评。我们提供许多不同的检测系统来适应广泛的实验优先事项。

为您的 IHC 检测选择合适的试剂是优化实验方案的重要组成部分。 Vector Laboratories 是您 IHC 工作流程每个步骤中优质标记和检测产品的资源。

载玻片准备

· 大化组织切片在载玻片上的保留和粘附。

· 划分和隔离各个部分以减少试剂使用或进行离散处理。

抗原修复

使用规定的 pH 值和盐溶液提高醛固定制剂的组织抗原性(“免疫反应性”)。醛固定(例如福尔马林)和石蜡包埋过程中的热暴露相结合会使表位难以检测。在抗原修复过程中,组织会受到缓冲溶液和高温的组合处理,这会导致蛋白质发生构象变化,从而暴露抗原以供检测。

淬火/阻断

使用封闭溶液减少或消除组织切片和细胞制剂上不需要的背景(非特异性)染色。非特异性染色可能是由内源酶或组织成分引起的,包括内源酶活性、Fc 受体的存在或检测试剂与组织或细胞蛋白和其他大分子的相互作用。根据阴性对照切片的结果选择封闭溶液。

一抗/凝集素

使用经过验证的特定标记物来识别和定位细胞或组织制剂中的靶蛋白抗原或糖蛋白部分。选择一抗或凝集素时,请考虑组织种类和组织制备方法(例如固定),以确保与靶标特异性结合。

二抗

选择高度纯化和最佳偶联的检测试剂以满足检测条件,例如一抗种类、组织种类、靶标丰度和易用性(浓缩或即用型)。

三级试剂

如果需要,提高检测的灵敏度,以可视化弱或短暂表达、上调或未知(例如,基因敲入研究)抗原。

底物/显色剂

使用酶特异性显色显色来可视化您的目标蛋白抗原及其细胞和/或细胞外定位和相对表达水平。选择符合您颜色偏好且与其他系统试剂兼容的酶底物(例如复染剂、封固剂和其他底物(如果多重检测))。

复染

使用对比核染色来澄清异质形态结构内的靶抗原信号。这有助于阐明组织中的细胞结构和特定染色模式。选择与酶底物形成对比且与底物和封固剂化学相容的复染剂(蓝色、绿色或红色)。

盖玻片/封片

保留目标抗原染色剂以供短期或无限期存储和存档。选择与您的底物和复染剂兼容的封固剂。使用非水封固剂封固要存档的载玻片,或使用水性封固剂保存长达数年。

双染法免疫荧光组织化学染色步骤

双染法免疫荧光组织化学染色步骤

如果同一标本中需要同时显示A、B两种抗原,则A抗原的抗体用FITC标记,B抗原的抗体用TRITC标记,可采用以下染色方法用过的:

免疫荧光细胞化学双染

原代培养的大鼠端脑细胞第14天胚胎:在成骨形态蛋白的诱导下,乙酰胆碱转移酶(绿色荧光)和同源结构域蛋白Islet-1(红色荧光)共存于细胞质中(激光扫描共存)。聚焦显微镜观察)

1.一步双染法,将两种荧光标记抗体按适当比例(A+B)混合,按照直接法进行染色。

2.两步双染法,先用TRITC标记的抗体A进行免疫荧光染色,然后用FITC标记的抗体B进行免疫荧光染色。根据两种抗体的动物种类,可以采用直接法或间接法结果是A抗原呈橙红色荧光,而B抗原呈黄绿色荧光。在应用中,常用的方法是免疫荧光组织化学中的间接法与荧光染料SABC-Cy3法的结合。例如,在实验设计中,选择小鼠抗大鼠A和兔抗大鼠B作为两种不同的特异性一抗,匹配的二抗分别为FITC-抗小鼠IgG和生物素化抗兔。免疫球蛋白G。

进行双染时,由于两种一抗来源不同,可能会混合一抗。孵育后,清洗未结合的一抗。滴加二抗时,先加入人生物素化抗兔IgG(二抗)孵育。清洗后,滴下 SABC-Cy3 复合物。特异性荧光,然后与FITC-抗小鼠IgG(二抗)孵育,最后封片观察。结果,A抗原显示绿色荧光,B抗原显示红色荧光。

该方法中需要注意的是,两种一抗混合稀释时,抗体的终浓度应为每种抗体的工作浓度。也就是说,混合液要同时满足两种一抗的工作浓度。如果两个一抗来自同一物种,则必须进行两次双染,即A抗原先用第一个一抗和第一个荧光二抗染色,然后用第二个一抗和第一个荧光二抗洗涤荧光二抗。 B抗原染色需使用两种荧光二抗,否则会发生交叉反应,导致染色不特异。

免疫组化试验抗体选择及常用染色方法

免疫组化试验抗体选择及常用染色方法一、免疫组织化学(Immunohistochemistry,IHC)
免疫组织化学是利用抗原抗体的特异性结合的原理,通过化学反应使标记抗体的显色剂 (荧光素、酶、金属离子、同位素) 显色来确定组织细胞内抗原(多肽和蛋白质),对其进行定位、定性及定量的研究。免疫组织化学染色技术不仅有较高的敏感性和特异性,其特点是将形态学改变与功能、代谢变化结合起来,直接在组织切片,细胞涂片或培养细胞爬片上定位一些蛋白质和多肽类物质的存在,并可精确到亚细胞结构水平,结合电子计算机图像分析系统或激光扫描共聚集显微术等技术,对被检物质进行定量分析。
免疫组化实验所用的组织和细胞标本有哪些
实验所用主要为组织标本和细胞标本两大类,前者包括石蜡切片(病理大片和组织芯片)和冰冻切片,后者包括组织印片、细胞爬片和细胞涂片。其中石蜡切片是制作组织标本最常用、最基本的方法,对于组织形态保存好,且能作连续切片,有利于各种染色对照观察;还能长期存档,供回顾性研究;石蜡切片制作过程对组织内抗原暴露有一定的影响,但可进行抗原修复,是免疫组化中首选的组织标本制作方法。
石蜡切片为什么要做抗原修复?有哪些方法
石蜡切片标本均用甲醛固定,使得细胞内抗原形成醛键、羧甲键而被封闭了部分抗原决定簇,同时蛋白之间发生交联而使抗原决定簇隐蔽。所以要求在进行IHC染色时,需要先进行抗原修复或暴露,即将固定时分子之间所形成的交联破坏,而恢复抗原的原有空间形态。
常用的抗原修复方法有微波修复法,高压加热法,酶消化法,水煮加热法等,常用的修复液是pH6.0的0.01 mol/L的柠檬酸盐缓冲液。

二、免疫组化实验用抗体的选择
1、一抗选择要点
(1)选择单克隆还是多克隆抗体。由一种克隆产生的特异性抗体叫做单克隆抗体,单克隆抗体能目标明确地与单一特异抗原决定簇结合,就象导弹精确地命中目标一样。另一方面,即使是同一个抗原决定簇,在机体内也可以由好几种克隆产生抗体,形成好几种单克隆抗体混杂物,称为多克隆抗体。在抗原抗体反应中,一般单克隆抗体特异性强,但亲和力相对小,检测抗原灵敏度相对较低;而多克隆抗体特异性稍弱,抗体的亲和力强,灵敏度高,但易出现非特异性染色(可以通过封闭等有所避免)。
(2)种属来源。一般家兔来源的抗体多是多克隆;而小鼠来源的抗体多是单克隆,但也有另外。这条主要要与后面的二抗来源相匹配。
(3)实验目的是检测什么种属的抗原,即species reactivity。这一点很重要,一般说明书上都有注明,如小鼠Ms、大鼠Rat、人Hum等等。
(4)能否做免疫组化。一般一抗说明书都会注明做WB、IHC、ICC、IF等,建议最好选择注明的抗体,因为一般都是经过文章证明。
(5)检测标本类型。用于检测石蜡切片还是冰冻切片,一般能做石蜡切片的抗体,可能都可以用来检测冰冻切片,但能做冰冻切片的抗体,不一定能检测石蜡切片中的抗原。
(6)生产厂家。国外著名抗体生产商原装抗体质量一般没问题,尤其是美国Lifespan公司生产的IHCPlusAntibodies系列抗体,全部经过病理组织切片检测验证,100%质量保证,国内上海金畔生物科技有限公司有售,就是价格有点贵;而国内分装厂家用的一抗工作液,价格便宜,但有时结果的稳定性和重复性稍差,不同批次重复性较差。
(7)价格与质量的矛盾。我个人认为一抗原装质量可能会好点,因为许多一抗避免反复冻融,且在稀释液中稳定性较差(若时间长),但价格较贵。

2、二抗选择要点
(1)种属来源。主要根据一抗种属来源来决定购买二抗来源,如一抗是小鼠来源,那二抗就买抗小鼠的即可(羊、兔等均可)。
(2)标记物的选择。有HRP、Biotin、荧光素等标记物。一般SP三步法二抗选择Biotin标记的二抗,以与后面的SP结合反应;而免疫荧光染色就需要购买不同荧光素标记的二抗,如罗丹明、FITC、Cy3等常用荧光素。这主要与后面有无三抗和三抗种类有关。
(3)选择IgM还是IgG。一般一抗是IgM,那么二抗就选择IgM;反之,一抗是IgG,则二抗选择IgG。
(4)生产厂家。一般SP三步法我们实验室选择中杉金桥的二抗染色试剂盒,内含有工作液的二抗,故试验中只需摸索一抗的浓度即可,效果还可以;而免疫荧光的二抗我一般选择KPL公司,效果还不错。

三、免疫组化常用的染色方法有哪些
根据标记物的不同分为免疫荧光法,免疫酶标法,亲和组织化学法,后者是以一种物质对某种组织成分具有高度亲合力为基础的检测方法。这种方法敏感性更高,有利于微量抗原(抗体)在细胞或亚细胞水平的定位,其中生物素——抗生物素染色法最常用。
免疫组织化学染色方法 IHC染色方法有很多种,按部标记物的性质可分为荧光法(荧光素标记),酶法(辣根过氧化物酶,碱性磷酸酶),免疫金银及铁标记技术等;按染色步骤可分为直接法(又称一步法)和间接法(二步,三步或多步法);按结合方式可分为抗原-抗体结合,如PAP法和标记的葡聚糖聚合物(labeled dextran polymer,LDP)法,以及亲和连接,如ABC法、标记的链亲和素-生物素(labeled streptoavidin-biotin ,LSAB)法等,其中LSAB是最常用的使用方法。
影响免疫组化染色质量的因素很多,在实验中应注意组织的取材和固定,选择质量好的商品化抗体,恰当的选择和使用封闭和抗原修复手段,严格的技术操作和对照等。由于组织内待测抗原已被分解破坏,或抗原含量过低、或固定剂的使用不当及抗体质量不佳和稀释度不当等可出现假阴性反应;反之,由于抗体与非待检抗原发生交叉反应,或组织对抗体的非特异性吸附及内源性过氧化酶(endogenousperoxidase)没有被阻断等还可出现假阳性结果。这些可造成判断的失误。