使用 3Dye 差异蛋白质组试剂进行蛋白质标记

使用 3Dye 差异蛋白质组试剂进行蛋白质标记

差异蛋白质组学可以比较来自不同生物来源的大量蛋白质。通常的例子是经过处理和未经处理的细胞、不同的细菌菌株。即使蛋白质谱中的微小差异也可以通过差异蛋白质组学来发现。

Lumiprobe 3Dye 套件包含 Cyanine2、Cyanine3 和 Cyanine5 染料,它们的光谱不同,但迁移率匹配。因此,用这些染料标记的蛋白质在凝胶电泳中共同迁移。由于使用染料进行的蛋白质标记依赖于 NHS 酯化学,因此赖氨酸残基是标记的主要位点。

二维蛋白质组学的最佳实践意味着使用合并的内部对照样本,该样本本质上是在一个实验中分析的两个样本的混合物。内部对照样品用 Cyanine2 标记,分析样品用 Cyanine3 或 Cyanine5 标记(这两种染料可以互换)。

3Dye 试剂以 5 nmol、10 nmol 和 25 nmol 包装进行预先测量。染料被冻干以延长其保质期。每个包装在使用前均应用 DMF 重新配制。 DMF 质量对于实验和产品保质期至关重要。套件中的染料附带 DMF。

蛋白质混合物的制备是测定中变化最大、要求最高的部分。它超出了协议的范围,因为不同的样品需要非常不同的裂解条件才能获得适合检测的蛋白质混合物。本质上,被比较的两个样品应该在相同的条件下裂解以获得有意义的结果。一般来说,如果实验需要裂解,建议使用基于 CHAPS 的裂解溶液。

在比较两种蛋白质混合物的制备后,可以使用以下方案来实现标记:

  1. 通过每 1 nmol 每种染料添加 1 μL DMF(来自试剂盒),制备每种染料的 1 mM 库存溶液。这些溶液在 -20°C 下可稳定保存三个月。为了确保保质期,在打开前将管干燥、全解冻,在关闭前尽可能用惰性气体吹扫。

  2. 使用无胺缓冲液(NaHCO3、醋酸盐)或 Tris 缓冲液将蛋白质混合物 pH 调节至 8.5。在单独的小瓶中,准备三个用于标记的蛋白质样品:(1) 第一个蛋白质样品,(2) 第二个蛋白质样品,以及 (3) 两者的混合物(合并的内部对照)。每个样品中的蛋白质浓度理想情况下应为 5–10 mg/mL,但也可以使用低至 1 mg/mL 的浓度。每次反应取 50 μg 蛋白质。

  3. 通过取等分的 1 mM 库存溶液并用 DMF 稀释至 0.4 mM 来制备染料工作溶液。

  4. 将 1 μL 工作染料溶液添加到反应混合物中:Cyanine3 表示未处理,Cyanine5 表示处理过(反之亦然),Cyanine2 表示合并的内部对照。通过移入和移出混合每个反应,并在黑暗中放置 30 分钟。

  5. 通过向每种溶液中添加 1 μL 10 mM 赖氨酸来停止反应(试剂盒中不包含该试剂,但该试剂很容易获得)。

  6. 合并三个样品并运行 2D 凝胶。

  7. 使用任何能够检测 Cyanine2、Cyanine3 和 Cyanine5 的成像仪进行分析。可以从凝胶上切下蛋白质斑点并通过质谱分析。

不同实验室用水级别有何差异?

不同实验室用水级别有何差异?

Milli-Q® 实验室用水解决方案的台式水系统系列包括纯水和超纯水两种系统,可满足任何实验室要求。从灵敏的质控分析到缓冲液制备和玻璃器皿清洗,这一紧凑型系列可解决实验室方方面面的用水需求。我们的专家可就以下因素,帮助您找到适合的纯水解决方案:   

  • 应用

  • 水质级别

  • 需求容量

  • 实验室配置

  • 预算

  • 远程监控

  • 可持续发展目标

不同实验室用水级别有何差异?

实验室用水级别由ASTM或ISO 3696等质量标准定义,有助于特定应用选择适合的水质。这些标准也考虑了生产成本,如1级(Type 1)超纯水的生产成本远高于2级(Type 2)或3级(Type 3)纯水。

1级超纯水 不含离子(电阻率18.2 MΩ·cm)且总有机碳(TOC)含量低。建议在敏感的实验室应用中采用超纯水,如先进的分析技术(如HPLC、UHPLC、LC-MS、ICP-MS、GF-AAS)、分子生物学应用(如PCR测序)和用于制备哺乳动物细胞培养缓冲液和培养基。

2级纯水 建议用于一般实验室应用,例如缓冲液、试剂和培养基的制备以及供应其他设备(如1级系统、临床分析仪、实验室器皿清洗机、稳定性试验箱等)。我们的2级系统引入绿色的 Elix® 电去离子(EDI)技术 生产质量稳定的纯水,同时无需有害的化学再生步骤、昂贵的树脂、更换去离子滤芯和添加软化剂。

3级纯水是低的用水级别,通过反渗透(RO)法生产。建议在 非关键型 实验室应用中使用RO水,例如玻璃器皿清洗、加热水浴、高压蒸汽灭菌以及供应1级水系统。

临床实验室试剂级纯水(CLRW)符合美国临床和实验室标准协会(CLSI®)指南制定的质量标准,根据该标准,临床实验室的用水纯度为电阻率>10MΩ·cm;TO <500ppb;细菌<10cfu/mL;颗粒过滤>0.22μm。

节省空间且提供从安装到取水的灵活选项

我们的台式系统经设计可节省宝贵的实验室空间,提供灵活多变的安装、储水和取水选项。我们最新的Milli-Q® IQ、IX和EQ系列系统只需在工作台或墙面安装纤巧的POD取水器。结构紧凑的纯化装置和水箱可集成在工作台下、安装在墙上或通过两种方式结合来满足您的要求。

当实验室需要多个取水点时,一套Milli-Q® IQ或Milli-Q® IX纯水系统最多可连接4个取水器,POD取水器之间最大距离可达5m。因此,即使是在远处的工作台、甚至是在另一个实验室的科学家,也可以取用纯水。此外还提供一系列的产水流速和水箱体积选择,满足您的实验室需求。

数字化服务简化纯水系统维护、保障生产效率

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

差异培养基是含有能够在视觉上区分生长在其上的微生物的化合物的培养基。这些培养基利用微生物的代谢和生化能力,导致外观发生明显变化。

差异化培养基通常包含指示剂,例如染料、pH 指示剂或可以被某些微生物代谢但不能被其他微生物代谢的特定底物。这些指示剂的存在或不存在或由此产生的颜色变化有助于辨别不同的微生物群或识别特定的代谢活动。

例如,使用含有 X-gal 的差异培养基进行蓝白斑筛选,通过鉴定具有所需遗传构建体的菌落来促进基因克隆。

选择性培养基和差异培养基之间的差异与每种培养基如何用于筛选转化细胞有关。选择性培养基根据生长情况筛选细胞,而差异培养基根据外观筛选细胞。

选择性培养基和差异培养基都可以帮助您决定在克隆过程中继续使用哪些菌落。

使用选择性培养基,不需要的细胞无法存活。因此,选择是基于增长的。

介导所需细胞和不需要细胞之间的分化的典型化合物是抗生素。

所需的细胞对这种抗生素具有抗性,即使在该抗生素存在的情况下也能生长。然而,不需要的细胞对抗生素敏感并且无法存活。

使用差异培养基,所需的和不需要的细胞都会生长,但可以根据集落的视觉特征来区分和筛选它们。

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

图 1.选择性媒体的工作原理与差异媒体的工作原理的图示。只有幸存的菌落才能在选择性培养基上生长。使用差异培养基,所有菌落都会生长,但可以被识别。

差异培养基的工作原理是它们含有特定酶的底物。

底物一旦被这种酶分解,就会产生有色产物。肉眼很容易发现颜色差异。

图一的差异培养基示例显示了结果中的这种颜色差异,其中白色菌落是所需菌落,而蓝色菌落不是。

为了更深入地了解这一点,请查看图 2,它演示了其工作原理。

您添加某种化合物(白色),我们在固体培养基板中将其称为化合物 C。当化合物 C 被特定的酶(我们称之为酶 E)分解时,产物是蓝色化合物。

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

图 2.差分媒体工作原理的概念表示。


现在,在这个特定的示例中,您设计的基因构建体使得具有所需基因构建体的细胞将产生酶 E。因此,一旦它们在平板上生长,它们的集落就会呈蓝色。

另一方面,不需要的菌落——没有所需基因构建的菌落不会产生酶 E,并且它们的菌落将是白色的。

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图 3.带有蓝色和白色菌落的平板照片。


在大多数克隆实验中,具有所需基因构建体的菌落是白色的,不需要的菌落是蓝色的。

这是通过称为 α 互补(α-complementation)的概念来实现的——大多数克隆宿主菌株(例如DH5-α)的一个特征。

由于本文是为了说明差异培养基在基因克隆过程中如何发挥作用,因此我们不会过多讨论蓝白斑筛选背后的分子遗传学。

为此,我们建议您查看这篇文章,其中我们详细说明了蓝白斑筛选的概念。

同样,蓝白斑筛选相关的实验方案请参考这篇文档

然而,为了正确理解差异媒体的概念,这里简要描述了蓝白斑筛选过程中发生的情况。

β-半乳糖苷酶是蓝白斑筛选的核心。 β-半乳糖苷酶由lacZ基因作为lac操纵子的一部分合成,β-半乳糖苷酶分解乳糖。

DH5-α 等克隆宿主菌株编码 β-半乳糖苷酶的突变形式,其中氨基末端的氨基酸 11-41 被删除。这种突变型 β-半乳糖苷酶被称为ω-肽,它不能单独分解乳糖或全功能 β-半乳糖苷酶(例如 X-gal)的其他底物。

同时,相应的克隆载体如pUC19在多克隆位点编码一种称为LacZ-α或α-肽的多肽。 LacZ-α / α-肽组成 β-半乳糖苷酶的 59 个氨基酸。

当宿主菌株的基因组表达ω-肽并且载体表达α-肽时,形成功能齐全的β-半乳糖苷酶,可以分解乳糖或其类似物。这称为α-互补。

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作


图 4. α-互补示意图。


因此,当带有克隆载体的宿主细胞接种在含有 X-gal 的培养基上时,表现出 α-互补的集落会产生功能性 β-半乳糖苷酶,分解 X-gal,形成蓝色产物。结果,菌落呈蓝色。


因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作图 5.功能性 β-半乳糖苷酶在含有 X-gal 的培养基中形成蓝色菌落,用于蓝白斑筛选实验。


另一方面,不具有克隆载体表达的α-肽的宿主细胞不会表现出α-互补,并且不会产生功能性β-半乳糖苷酶。因此,X-gal不会被这些细胞分解。他们的殖民地将是白色的。

请注意,α-肽的基因位于克隆载体的多克隆位点 (MCS)。因此,如果载体为空白,即 MCS 内没有克隆转基因,则仍会产生 α 肽。在此,将发生 α-互补,并且由于 X-gal 被功能性 β-半乳糖苷酶分解,集落呈蓝色。

如果载体在其 MCS 内克隆了转基因,则转基因会破坏 α 肽的基因。该基因被破坏的结果是没有产生功能性的β-半乳糖苷酶,并且X-gal不会被这些细胞分解。

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

图 6.由于基因插入而破坏的lacZα序列不编码 α 肽。


这就是为什么平板上 所需的菌落会是白色的——编码 α 肽的基因被目标转基因破坏,这正是我们想要的。

因此,在这种情况下,只需查看集落,您就可以轻松辨别哪些细胞具有空白质粒(它们是蓝色的),哪些集落具有转基因插入片段(这些集落是白色的)。

因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

图 7.示意图显示了在蓝白斑筛选实验中如何区分具有带插入基因的质粒的菌落和不具有插入基因的菌落。


虽然这是在基因构建体克隆过程中使用蓝白斑筛选的常见方法,但还有另一种蓝白斑筛选方法。

这里,蓝色菌落代表具有必要构建体的菌落,白色菌落不具有该构建体。

这是当遗传构建体被克隆到宿主菌株的基因组中而不是我们上面讨论的方式的克隆载体中时。

查看图 8 中绘制的结构。


因克隆中的差异培养基是什么以及它如何工作

图8.克隆到宿主菌株基因组中的基于LacZ的转录报告基因构建体。


该构建体描述了测量启动子 P转录效率的报告基因。该启动子越强, lacZ转录的水平就越高,最终细胞合成的 β-半乳糖苷酶的水平就越高。

因此,β-半乳糖苷酶活性可用作测量该启动子强度的读数。

这些类型的报告基因广泛应用于分子生物学。

在此类构建体的基因工程过程中采用蓝白斑筛选。 X-gal 平板上显示为蓝色的菌落的基因组中含有该构建体。它们就是我们想要的殖民地。白色菌落的基因组中没有该构建体;他们是不受欢迎的殖民地。

一旦制备出所需菌株并使用差异培养基通过蓝白斑筛选进行筛选,下一步将测试启动子强度。

为此,测试菌株和对照菌株在液体培养物中培养至相等的细胞密度,然后使用米勒测定法测量β-半乳糖苷酶活性。

该测定的结果用作测量 lacZ 融合的启动子强度的读数(如上图 8 所示)。通过观察更多相应的β-半乳糖苷酶活性来指示启动子强度越高。

这里需要注意的是,差异培养基和蓝白斑筛选用于筛选具有必要遗传构建体的菌落,但在实际酶测定中则不然,在实际酶测定中,实验者使用不同的 β-半乳糖苷酶底物 – 例如 ONPG(2 -硝基苯基-β-D-吡喃半乳糖苷)。

红白筛选培养基

红白斑筛选在理论上和技术上与蓝白斑筛选相同。

然而,β-半乳糖苷酶的底物化合物不是 X-gal,而是添加到培养基中的品红色-gal。品红半乳糖被β-半乳糖苷酶分解后形成的产物呈红色。

因此,根据菌落是否产生功能性 β-半乳糖苷酶,它们会是红色或白色。

与蓝白斑筛选非常相似,红白斑筛选用于基因克隆过程中,以检查哪些集落克隆了必要的基因构建体。