Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒-AAT Bioquest荧光染料

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Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒价格 4245
产品规格

200 Tests

产品货号

Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒

产品参数
Ex (nm) Em (nm)
分子量 溶剂
存储条件
产品概述

脂质过氧化是细胞脂质被活性氧(ROS)氧化降解的过程。 该过程不仅可以导致细胞膜完整性的破坏,而且可以使膜结合受体失活。 它是自由基介导的细胞损伤的主要原因之一。 Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒提供了一种检测脂质过氧化的灵敏方法。该试剂盒使用我们敏感的比例脂质过氧化指示剂Lipoxite R590 / G520,当细胞中的ROS被过氧化时,它的红色荧光从红色变为绿色,这种依赖于过氧化的转变使得可以进行脂质过氧化的比例测量。我们的试剂盒包括过氧化氢,作为诱导脂质过氧化的阳性对照治疗方法。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商,为您提供优质的Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒。

 

适用仪器


流式细胞仪  
Ex: 488 nm
Em: 530/30 nm、575/26 nm   
通道: PE 通道

 


荧光显微镜

Ex: 490 nm (FITC) 和 545 nm (TRITC) 
Em: 530 nm (FITC) 和 600 nm (TRITC)
推荐孔板: 黑色透明底板
通道: FITC 和 TRITC通道
实验方案

样品实验方案

简要概述

  1. 处理平板细胞。
  2. 用目标化合物处理孵育细胞。
  3. 添加Lipoxite R590 / G525。
  4. 除去介质,并用PBS洗涤。
  5. 通过FITC / TRITC或FITC / PE通道通过荧光显微镜或流式细胞仪分析样品。

 

溶液配制 

工作溶液配制

通过将500X Lipoxite R590 / G525(组分A)以1:50稀释到HHBS(组分B)中,制备Lipoxite R590 / G525的10X工作溶液。

 

实验步骤

1.以所需的密度培养细胞,并在37°C含5%CO2的潮湿箱中孵育过夜。

2.根据需要用测试化合物处理细胞。 注意:对于阳性对照,以约250 µM(1X)的终浓度向细胞中添加过氧化氢(组分C)30分钟。

3.向细胞中添加10X Lipoxite R590 / G525,终浓度为1X(例如,向90uL细胞中添加10uL)。

4.将细胞在5%CO2细胞培养箱中于37°C孵育30分钟。

5.除去培养基,并用HHBS(组分B)或DPBS洗涤细胞三遍。

6.在染色后2小时内,使用荧光显微镜或流式细胞仪通过FITC/TRITC或FITC/PE通道检测细胞的荧光。

 

图示

Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒

图1. HeLa细胞在37°C的完全生长培养基中用1X Lipoxite R590 / G525染色30分钟。 对于H2O2处理,将约250 µM H2O2添加到细胞中并孵育30分钟。 然后将细胞与1X Lipoxite R590 / G525孵育,并在孵育的后10分钟内用Hoechst 33342染色。 用HHBS洗涤细胞3次,并用Keyence荧光显微镜成像。 用H2O2处理,观察到红色到绿色的荧光信号明显转移。

Cell Meter 荧光细胞脂质过氧化测定试剂盒

图2. Jurkat细胞在37°C的完全生长培养基中用1X Lipoxite R590 / G525染色30分钟。 对于H2O2处理,将约250 µM H2O2添加到细胞中并孵育30分钟。 然后将细胞与1X Lipoxite R590 / G525孵育,并用流式细胞仪通过FITC(488/530 nm)和PE(488/572 nm)通道进行分析。 数据表示为红色(PE)/绿色(FITC)荧光强度的比率。 在H2O2处理的细胞中,红色/绿色的比率降低,表明存在H2O2诱导的脂质过氧化。

 

活性氧 Cell Meter 荧光法线粒体超氧化物检测试剂盒 适合于酶标仪-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
活性氧 Cell Meter 荧光法线粒体超氧化物检测试剂盒 适合于酶标仪 价格 4245
产品规格

200 Tests

产品货号

活性氧 Cell Meter 荧光法线粒体超氧化物检测试剂盒 适合于酶标仪

产品参数
Ex (nm) Em (nm)
分子量 溶剂
存储条件
产品概述

线粒体是细胞超氧化物的主要生产者。低中等水平的超氧化物的产生对于许多重要细胞过程的适当调节至关重要,这些过程包括基因表达,信号转导和肌肉对耐力运动训练的适应性。不受控制的线粒体超氧化物的产生会触发细胞氧化损伤,从而导致多种疾病的发病机理,包括癌症,心血管疾病,神经退行性疾病和衰老。Cell Meter 荧光法线粒体过氧化物检测试剂盒使用我们独特的超氧化物指示剂来定量活细胞中的超氧化物水平。MitoROS 580具有活细胞渗透性,可以快速,选择性地靶向线粒体中的超氧化物。与超氧化物反应时会生成红色荧光。Cell Meter 荧光法线粒体过氧化物检测试剂盒提供了一种灵敏的一步荧光测定法,可在培养一小时后检测活细胞中的线粒体超氧化物。该试剂盒可用于荧光酶标仪和荧光显微镜应用。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商,为您提供优质的Cell Meter 荧光法线粒体过氧化物检测试剂盒。

活性氧(ROS)篇:包含总ROS和多种活性氧离子检测试剂大全

 

适用仪器


荧光酶标仪  
Ex: 540 nm
Em: 590 nm
Cutoff: 570 nm
推荐孔板: 黑色透明底板
读取模式: 底部读取
实验方案

样品实验方案

简要概述

  1. 在生长培养基中准备细胞
  2. 用测试化合物处理细胞以诱导超氧化物
  3. 添加MitoROS 580工作溶液
  4. 在37°C下将细胞染色30-60分钟
  5. 检测Ex / Em = 540/590 nm(截止= 570 nm)处的荧光增加(底部读取模式)或使用配备TRITC滤光片的荧光显微镜

 

溶液配制

储备溶液配制

  1. MitoROS 580储备溶液(500X):将50 µL DMSO(组分C)添加到MitoROS 580(组分A)的小瓶中,并充分混合以制成500X MitoROS 580储备液,避光。 注意:25 µL 500X MitoROS 580储备溶液足以用于1个板。 为了存放,请将管子紧紧密封。

 

工作溶液配制

将25μL的500X MitoROS 580储备溶液添加到10 mL的测定缓冲液(组分B)中,并充分混合以制成MitoROS 580工作溶液。 注意:此MitoROS 580工作溶液在室温下至少可稳定2小时。

 

实验步骤

  1. 在所需的缓冲液(例如PBS或HHBS)中,用10 µL 10X测试化合物(96孔板)或5 µL 5X测试化合物(384孔板)处理细胞。 对于对照孔(未处理的细胞),添加相应量的化合物缓冲液。

  2. 为了诱导超氧化物,将细胞板在37°C下孵育所需的时间,避光。 注意:我们在37°C下用50 µM抗霉素A(AMA)处理HeLa细胞30分钟,以诱导超氧化物。 有关详细信息,请参见图1。

  3. 将100 µL /孔(96孔板)或25 µL /孔(384孔板)的MitoROS 580工作溶液添加到细胞板中。

  4. 将细胞在37°C下孵育30至60分钟。

  5. 使用荧光酶标仪(Ext / Em = 540/590 nm(Cutoff = 570 m))检测荧光强度,或者使用带有TRITC滤光片的荧光显微镜观察细胞。

 

图示

 

活性氧 Cell Meter 荧光法线粒体超氧化物检测试剂盒 适合于酶标仪

图1.使用Cell Meter 荧光细胞内超氧化物检测试剂盒(Cat#22971)在HeLa细胞中测量超氧化物的荧光图像。 将100,000个细胞/孔/ 100 µL的HeLa细胞在96孔黑色板中接种过夜。 AMA处理:将细胞在37°C下用50 µM抗霉素A(AMA)处理30分钟,然后与MitoROS 580孵育1小时。 未经处理的对照:HeLa细胞与MitoROS 580在37°C下孵育1小时,未经AMA处理。 使用带有TRITC滤光片的荧光显微镜检测荧光信号。

活性氧 Cell Meter 荧光法线粒体超氧化物检测试剂盒 适合于酶标仪

图2.使用Cell Meter 荧光细胞内超氧化物检测试剂盒(Cat#22971)检测HeLa细胞中的细胞内超氧化物。 将100,000个细胞/孔/ 100 µL的HeLa细胞在96孔黑色板中接种过夜。 将细胞与50 µM绿脓素(Pyo)孵育; 50 µM抗霉素A(AMA)或未经处理(对照)在37ºC下放置30分钟。 然后将细胞与MitoROS 580在37℃孵育1小时。 使用CLARIOstar酶标仪(BMG Labtech)以底部读取模式在Ex / Em = 540/590 nm(截止= 570 nm)下检测荧光信号。

 

 

参考文献

Concentration-dependent effect of sodium hypochlorite on stem cells of apical papilla survival and differentiation
Authors: Martin DE, De Almeida JF, Henry MA, Khaing ZZ, Schmidt CE, Teixeira FB, Diogenes A.
Journal: J Endod (2014): 51

Effect of hypochlorite oxidation on cholinesterase-inhibition assay of acetonitrile extracts from fruits and vegetables for monitoring traces of organophosphate pesticides
Authors: Kitamura K, Maruyama K, Hamano S, Kishi T, Kawakami T, Takahashi Y, Onodera S.
Journal: J Toxicol Sci (2014): 71

A simple yet effective chromogenic reagent for the rapid estimation of bromate and hypochlorite in drinking water
Authors: Zhang J, Yang X.
Journal: Analyst (2013): 434

Analysis of the germination kinetics of individual Bacillus subtilis spores treated with hydrogen peroxide or sodium hypochlorite
Authors: Setlow B, Yu J, Li YQ, Setlow P.
Journal: Lett Appl Microbiol (2013): 259

Comparative antimicrobial activities of aerosolized sodium hypochlorite, chlorine dioxide, and electrochemically activated solutions evaluated using a novel standardized assay
Authors: Thorn RM, Robinson GM, Reynolds DM.
Journal: Antimicrob Agents Chemother (2013): 2216

Effect of hypochlorite-based disinfectants on inactivation of murine norovirus and attempt to eliminate or prevent infection in mice by addition to drinking water
Authors: Takimoto K, Taharaguchi M, Sakai K, Takagi H, Tohya Y, Yamada YK.
Journal: Exp Anim (2013): 237

Green synthesis of carbon dots with down- and up-conversion fluorescent properties for sensitive detection of hypochlorite with a dual-readout assay
Authors: Yin B, Deng J, Peng X, Long Q, Zhao J, Lu Q, Chen Q, Li H, Tang H, Zhang Y, Yao S.
Journal: Analyst (2013): 6551

Use of pyrogallol red and pyranine as probes to evaluate antioxidant capacities towards hypochlorite
Authors: Perez-Cruz F, Cortes C, Atala E, Bohle P, Valenzuela F, Olea-Azar C, Speisky H, Aspee A, Lissi E, Lopez-Alarcon C, Bridi R.
Journal: Molecules (2013): 1638

A novel flow-injection analysis system for evaluation of antioxidants by using sodium dichloroisocyanurate as a source of hypochlorite anion
Authors: Ichiba H, Hanami K, Yagasaki K, Tanaka M, Ito H, Fukushima T.
Journal: Drug Discov Ther (2012): 44

Colorimetric determination of hypochlorite with unmodified gold nanoparticles through the oxidation of a stabilizer thiol compound
Authors: Zhang J, Wang X, Yang X.
Journal: Analyst (2012): 2806

Cell Meter 活细胞Caspase 3/7结合检测试剂盒 绿色荧光-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 活细胞Caspase 3/7结合检测试剂盒 绿色荧光 价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 3/7结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞半胱天冬酶活性检测试剂盒基于半胱天冬酶的荧光抑制剂。这些抑制剂具有细胞渗透性和非细胞毒性。一旦进入细胞,半胱天冬酶抑与活性半胱天冬酶共价结合。胱天蛋白酶3/7的激活对于细胞凋亡的起始是重要的。已经证明胱天蛋白酶3/7对肽序列Asp-Glu-Val-Asp(DEVD)具有底物选择性。该试剂盒使用TF3-DEVD-FMK作为半胱天冬酶3/7活性的荧光指示剂。TF3-DEVD-FMK在凋亡细胞中不可逆地结合活化的胱天蛋白酶3/7。一旦与胱天蛋白酶3/7结合,荧光试剂保留在细胞内。结合抑制caspase 3/7,但不会阻止细胞凋亡的进行。

有多种参数可用于检测细胞凋亡。这种Cell Meter 活细胞半胱天冬酶3/7活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中胱天蛋白酶3/7的活化来检测细胞凋亡。它用于定量凋亡细胞中活化的caspase 3/7活性,或用于筛选caspase 3/7抑制剂。TF3-DEVD-FMK,红色标记试剂,允许通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的半胱天冬酶3/7。该试剂盒为所有必需组分提供优化的分析方案。

点击查看光谱

 

适用仪器


流式细胞仪  
参数 见表1
荧光显微镜  
推荐孔板: 黑色透明
通道: 见表1
荧光酶标仪  
推荐孔板: 黑色孔板
通道: 见表2

表1:用于流式细胞仪和荧光显微镜的荧光强度检测

  流式细胞仪 荧光显微镜
FAM-DEVD-FMK FL1 通道 FITC 通道
Propidium Iodide FL2 通道 TRITC 通道
Hoechst Dye 紫色激光 DAPI 通道

表2:荧光酶标仪的荧光强度检测

  激发 发射 cutoff
FAM-DEVD-FMK FL1 通道 FITC 通道 515nm
Propidium Iodide FL2 通道 TRITC 通道  
Hoechst Dye 紫色激光 DAPI 通道  
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用测试化合物制备细胞,密度为5×105至2×106个细胞/ mL

将TF3-DEVD-FMK以1:150的比例加入细胞溶液中

在室温下孵育1小时

沉淀细胞,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 550 / 595nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向TF3-DEVD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X TF3-DEVD-FMK DMSO储备溶液。 将150×TF3-DEVD-FMK以1:150的比例加入细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO2培养箱中孵育1小时。

注1:对于TF3-DEVD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X TF3-DEVD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用TF3-DEVD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

3.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:TF3-DEVD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤5。

4.如果需要,用DNA染色标记细胞(例如用于死细胞的Nuclear Green DCS1,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

5.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 550/595 nm处检测荧光强度(对于Nuclear Green DCS1,Ex / Em = 490/525 nm,对于Hoechst染料,Ex / Em = 350/461 nm)

5.1对于流式细胞仪,使用Ex / Em = 550/595 nm(用于Nuclear Green DCS1染色的FL1通道)的通道监测荧光强度。

5.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。 将100μL细胞悬浮液置于96孔黑色微量滴定板的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。 如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

5.3使用TRITC通道(用于Nuclear Green DCS1染色的FITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)在荧光显微镜下观察细胞。

5.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 550/595 nm(在570 nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

An inner activation gate controls TMEM16F phospholipid scrambling
Authors: Trieu Le, Zhiguang Jia, Son C Le, Yang Zhang, Jianhan Chen, Huanghe Yang
Journal: Nature communications (2019): 1846

Drosophila Subdued is a moonlighting transmembrane protein 16 (TMEM16) that transports ions and phospholipids
Authors: Trieu Le, Son C Le, Huanghe Yang
Journal: Journal of Biological Chemistry (2019): jbc–AC118

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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25 Tests

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Cell Meter 活细胞Caspase 3/7结合检测试剂盒 红色荧光

产品参数
Ex (nm) 554 Em (nm) 578
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞半胱天冬酶活性检测试剂盒基于半胱天冬酶的荧光抑制剂。这些抑制剂具有细胞渗透性和非细胞毒性。一旦进入细胞,半胱天冬酶与活性半胱天冬酶共价结合。胱天蛋白酶3/7的激活对于细胞凋亡的起始是重要的。已经证明胱天蛋白酶3/7对肽序列Asp-Glu-Val-Asp(DEVD)具有底物选择性。该试剂盒使用TF3-DEVD-FMK作为半胱天冬酶3/7活性的荧光指示剂。TF3-DEVD-FMK在凋亡细胞中不可逆地结合活化的胱天蛋白酶3/7。一旦与胱天蛋白酶3/7结合,荧光试剂保留在细胞内。结合抑制caspase 3/7,但不会阻止细胞凋亡的进行。

有多种参数可用于监测细胞凋亡。这种Cell Meter 活细胞半胱天冬酶3/7活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中胱天蛋白酶3/7的活化来检测细胞凋亡。它用于定量凋亡细胞中活化的caspase 3/7活性,或用于筛选caspase 3/7抑制剂。TF3-DEVD-FMK,红色标记试剂,允许通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的半胱天冬酶3/7。该试剂盒为所有必需组分提供优化的分析方案。

点击查看光谱

 

适用仪器


流式细胞仪  
激发: 550nm
发射: 595nm
通道: FL1通道
荧光显微镜  
激发: TRITC通道
发射: TRITC通道
通道: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 550nm
发射: 595nm
cutoff: 570nm
通道: 黑色透明
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用测试化合物制备细胞,密度为5×105至2×106个细胞/ mL

将TF3-DEVD-FMK以1:150的比例加入细胞溶液中

在室温下孵育1小时

沉淀细胞,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 550 / 595nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向TF3-DEVD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X TF3-DEVD-FMK DMSO储备溶液。 将150×TF3-DEVD-FMK以1:150的比例加入细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO2培养箱中孵育1小时。

注1:对于TF3-DEVD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X TF3-DEVD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用TF3-DEVD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

3.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:TF3-DEVD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤5。

4.如果需要,用DNA染色标记细胞(例如用于死细胞的Nuclear Green DCS1,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

5.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 550/595 nm处检测荧光强度(对于Nuclear Green DCS1,Ex / Em = 490/525 nm,对于Hoechst染料,Ex / Em = 350/461 nm)

5.1对于流式细胞仪,使用Ex / Em = 550/595 nm(用于Nuclear Green DCS1染色的FL1通道)的通道监测荧光强度。

5.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。 将100μL细胞悬浮液置于96孔黑色微量滴定板的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。 如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

5.3使用TRITC通道(用于Nuclear Green DCS1染色的FITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)在荧光显微镜下观察细胞。

5.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 550/595 nm(在570 nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

An inner activation gate controls TMEM16F phospholipid scrambling
Authors: Trieu Le, Zhiguang Jia, Son C Le, Yang Zhang, Jianhan Chen, Huanghe Yang
Journal: Nature communications (2019): 1846

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Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞半胱天冬酶活性检测试剂盒基于半胱天冬酶的荧光抑制剂。这些抑制剂具有细胞渗透性和非细胞毒性。一旦进入细胞,半胱天冬酶与活性半胱天冬酶共价结合。 Caspase-1主要参与促炎细胞因子的激活和细胞凋亡过程。已经证明胱天蛋白酶1对肽序列Tyr-Val-Ala-Asp(YVAD)具有底物选择性。该试剂盒使用FAM-YVAD-FMK作为半胱天冬酶1活性的荧光指示剂。 FAM-YVAD-FMK在凋亡细胞中不可逆地结合活化的半胱天冬酶1。一旦与半胱天冬酶1结合,荧光试剂保留在细胞内。结合抑制胱天蛋白酶1但不会阻止细胞凋亡的进行。

有多种参数可用于监测细胞凋亡。这种Cell Meter 活细胞半胱天冬酶1活性检测试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 1活化来检测细胞凋亡。它用于定量凋亡细胞中活化的半胱天冬酶1活性,或用于筛选半胱天冬酶1抑制剂。绿色标记试剂FAM-YVAD-FMK允许通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的半胱天冬酶1。该试剂盒为所有必需组分提供优化的分析方案。

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适用仪器


流式细胞仪  
激发: FL1通道
发射: FL1通道
仪器规格: 用于碘化丙啶的FL2通道
荧光显微镜  
激发: FITC通道
发射: FITC通道
通道: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 490nm
发射: 525nm
cutoff: 515nm
通道: 黑色透明
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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产品名称 货号
Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20115
Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20117
Cell Meter 活细胞Caspase 6结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20113

Cell Meter 活细胞Caspase 2结合检测试剂盒 绿色荧光-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 活细胞Caspase 2结合检测试剂盒 绿色荧光 价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 2结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞胱天蛋白酶活性测定试剂盒基于胱天蛋白酶的荧光FMK。 这些抑制剂是细胞可渗透的和无细胞毒性的。 一旦进入细胞,胱天蛋白酶抑制剂就与活性胱天蛋白酶共价结合。 此Cell Meter™活细胞caspase 2活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 2活化来检测细胞凋亡。 它用于定量凋亡细胞中活化的caspase 2活性,或用于筛选caspase 2抑制剂。 FAM-VDVAD-FMK(绿色标记试剂)可通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的胱天蛋白酶2。 该试剂盒为所有必需成分提供了优化的测定方案。

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适用仪器


流式细胞仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
荧光显微镜  
激发: 见表1
发射: 见表1
推荐孔板: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
通道: 黑色透明
读取模式: 底读模式

表1:用于流式细胞仪和荧光显微镜的荧光强度检测。

  FAM-VDVAD-FMK 碘化丙啶 hoechst 染料
流式细胞仪 FL1 通道 FL2通道 FL1通道
荧光显微镜 FITC 通道 TRITC 通道 DAPI通道
荧光酶标仪 490/525nm 535/635nm 350/461nm
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的佳细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

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Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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Cell Meter 活细胞Caspase 6结合检测试剂盒 绿色荧光 价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 6结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞胱天蛋白酶活性测定试剂盒基于胱天蛋白酶的荧光FMK。 这些抑制剂是细胞可渗透的和无细胞毒性的。 一旦进入细胞,胱天蛋白酶抑制剂就与活性胱天蛋白酶共价结合。 此Cell Meter 活细胞caspase 6活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 6活化来检测细胞凋亡。 它用于定量凋亡细胞中激活的caspase 6活性,或用于筛选caspase 6抑制剂。 FAM-VEID-FMK,绿色标记试剂,可通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的caspase 6。 该试剂盒为所有必需成分提供了优化的测定方案。

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适用仪器


流式细胞仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
荧光显微镜  
激发: 见表1
发射: 见表1
推荐孔板: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
通道: 黑色透明
读取模式: 底读模式

表1:参数信息

  FAM-VEID-FMK 碘化丙啶 hoechst 染料
流式细胞仪 530/30nm滤波片(FITC通道) 610/20nm滤波片(PE-Texas Red通道) 450/40nm滤波片(Pacific Blue通道)
荧光显微镜 FITC 通道 TRITC 通道 DAPI通道
荧光酶标仪 490/525nm 535/635nm 350/461nm
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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产品名称 货号
Cell Meter 活细胞Caspase 1结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20108
Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20115
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Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光 价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞胱天蛋白酶活性测定试剂盒基于胱天蛋白酶的荧光FMK。 细胞可渗透的和无细胞毒性的。 一旦进入细胞,胱天蛋白酶抑制剂就与活性胱天蛋白酶共价结合。 该Cell Meter 活细胞caspase 8活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 8活化来检测细胞凋亡。 它用于定量凋亡细胞中激活的caspase 8活性,或用于筛选caspase 8抑制剂。 FAM-LETD-FMK,绿色标记试剂,可通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的胱天蛋白酶8。 该试剂盒为所有必需成分提供了优化的测定方案。

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适用仪器


流式细胞仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
荧光显微镜  
激发: 见表1
发射: 见表1
推荐孔板: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
通道: 黑色透明
读取模式: 底读模式

表1:参数信息

  FAM-LETD-FMK 碘化丙啶 hoechst 染料
流式细胞仪 FL1通道 FL2通道 FL1通道
荧光显微镜 FITC 通道 TRITC 通道 DAPI通道
荧光酶标仪 490/525nm 535/635nm 350/461nm
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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Cell Meter 活细胞Caspase 1结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20108
Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20115
Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20117

Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光 价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞胱天蛋白酶活性测定试剂盒基于胱天蛋白酶的荧光FMK。 这些抑制剂是细胞可渗透的和无细胞毒性的。 一旦进入细胞,胱天蛋白酶与活性胱天蛋白酶共价结合。 此Cell Meter 活细胞caspase 9活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 9活化来检测细胞凋亡。 它用于定量凋亡细胞中活化的caspase 9活性,或用于筛选caspase 9抑制剂。 FAM-LEHD-FMK,绿色标记试剂,可通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的caspase 9。 该试剂盒为所有必需成分提供了优化的测定方案。

点击查看光谱

 

适用仪器


流式细胞仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
荧光显微镜  
激发: 见表1
发射: 见表1
推荐孔板: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 见表2
发射: 见表2
通道: 黑色透明
读取模式: 底读模式

表1:参数信息

  流式细胞仪 荧光显微镜
FAM-LEHD-FMK 530/30 nm激光(FITC 通道) FITC 通道
碘化丙啶 610/20 nm激光 (PE-Texas Red 通道) TRITC 通道
hoechst 染料 450/40 nm激光(Pacific Blue 通道) DAPI 通道

表2:参数信息

  激发 发射 cutoff
FAM-LEHD-FMK 490nm 525nm 515nm
碘化丙啶 535nm 635nm  
hoechst 染料 350nm 461nm  
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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产品名称 货号
Cell Meter 活细胞Caspase 1结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20108
Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20115
Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20117

Cell Meter 活细胞Caspase 10结合检测试剂盒 绿色荧光-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 活细胞Caspase 10结合检测试剂盒 绿色荧光 价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 10结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞胱天蛋白酶活性测定试剂盒基于胱天蛋白酶的荧光FMK。 这些细胞可渗透的和无细胞毒性的。 一旦进入细胞,胱天蛋白酶抑制剂就与活性胱天蛋白酶共价结合。 该Cell Meter 活细胞caspase 10活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 10活化来检测细胞凋亡。 它用于定量凋亡细胞中激活的caspase 10活性,或用于筛选caspase 10抑制剂。 FAM-VAD-FMK,绿色标记试剂,可通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的胱天蛋白酶10。 该试剂盒为所有必需成分提供了优化的测定方案。

点击查看光谱

 

适用仪器


流式细胞仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
荧光显微镜  
激发: 见表1
发射: 见表1
推荐孔板: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
通道: 黑色透明
读取模式: 底读模式

表1:参数信息

  FAM-AEVD-FMK 碘化丙啶 hoechst 染料
流式细胞仪 FL1 通道 FL2 通道 FL1 通道
荧光显微镜 FITC 通道 TRITC 通道 DAPI 通道
荧光酶标仪 490/525nm 535/635nm 350/461nm
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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Cell Meter 活细胞Caspase 1结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20108
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Cell Meter 活细胞Caspase 13结合检测试剂盒 绿色荧光-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 活细胞Caspase 13结合检测试剂盒 绿色荧光价格 4245
产品规格

25 Tests

产品货号

Cell Meter 活细胞Caspase 13结合检测试剂盒 绿色荧光

产品参数
Ex (nm) 493 Em (nm) 517
分子量 溶剂 Water
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

我们的Cell Meter 活细胞胱天蛋白酶活性测定试剂盒基于胱天蛋白酶的荧光FMK。 这些是细胞可渗透的和无细胞毒性的。 一旦进入细胞,胱天蛋白酶就与活性胱天蛋白酶共价结合。 此Cell Meter 活细胞caspase 13活性测定试剂盒旨在通过测量活细胞中的caspase 13活化来检测细胞凋亡。 它用于定量凋亡细胞中活化的caspase 13活性,或用于筛选caspase 13。 FAM-LEED-FMK,绿色标记试剂,可通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪直接检测凋亡细胞中活化的胱天蛋白酶13。 该试剂盒为所有必需成分提供了优化的测定方案。

点击查看光谱

 

适用仪器


流式细胞仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
荧光显微镜  
激发: 见表1
发射: 见表1
推荐孔板: 黑色透明
荧光酶标仪  
激发: 见表1
发射: 见表1
通道: 黑色透明
读取模式: 底读模式

表1:参数信息

  FAM-LEED-FMK 碘化丙啶 hoechst 染料
流式细胞仪 530/30 nm激光 (FITC 通道) 610/20 nm激光(PE-Texas Red 通道) 450/40 nm激光 (Pacific Blue 通道)
荧光显微镜 FITC 通道 TRITC 通道 DAPI 通道
荧光酶标仪 490/525nm 535/635nm 350/461nm
实验方案

分离细胞的检测方案

概述

用密度为5×105到2×106个细胞/ mL的测试化合物制备细胞

将FAM-YVAD-FMK以1:150的比例加入到细胞溶液中

在室温下孵育1小时

将细胞沉淀,用缓冲液或生长培养基洗涤并重悬细胞

在Ex / Em = 490 / 525nm处分析细胞

注:使用前将所有部件在室温下解冻。

 

操作方法

1.根据您的特异性诱导方案,将细胞培养至适于细胞凋亡诱导的密度,但不超过2 x 106个细胞/ mL。同时,对于每种标记条件,以与诱导群体相同的密度培养非诱导的阴性对照细胞群。以下是一些诱导悬浮培养细胞凋亡的例子:

1)用2μg/ ml喜树碱处理Jurkat细胞3小时。

2)用1μM星形孢菌素处理Jurkat细胞3小时。

3)用4μg/ ml喜树碱处理HL-60细胞4小时。

4)用1μM星形孢菌素处理HL-60细胞4小时。

注意:应对每个细胞系进行单独评估,以确定诱导细胞凋亡的细胞密度。

2.通过向FAM-YVAD-FMK(组分A)的小瓶中加入50μLDMSO制备150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液。

3.将150×FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液(来自步骤1)以1:150的比例添加到细胞溶液中,并将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1小时。

注1:对于FAM-YVAD-FMK标记,细胞可以浓缩至~5×10 6个细胞/ mL。 未使用的150X FAM-YVAD-FMK DMSO储备溶液应分为单次使用的等分试样并储存在-20°C。

注2:对于粘附细胞,用0.5mM EDTA轻轻提起细胞以保持细胞完整,并在用FAM-YVAD-FMK孵育之前用含血清的培养基洗涤细胞一次。

注3:适当的孵育时间取决于所用的细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。

4.将细胞以约200g旋转5分钟,并用1mL洗涤缓冲液(组分B)洗涤细胞两次。 将细胞重悬于所需量的洗涤缓冲液中。

注1:FAM-YVAD-FMK是荧光的,因此清除任何未结合的试剂以消除背景非常重要。

注2:对于分离的细胞,应将细胞浓度调节至每个微量滴定板孔中2-5×10 5个细胞/100μL等分试样,用于步骤6。

5.如果需要,用DNA染色标记细胞(如用于死细胞的碘化丙锭,或用于细胞核染色的整个群体的Hoechst)。

6.通过荧光显微镜,流式细胞仪或荧光酶标仪在Ex / Em = 490 / 525nm处检测荧光强度(对于碘化丙锭,Ex / Em = 535/635 nm;对于Hoechst染料,Ex / Em = 350 / 461纳米)。

6.1对于流式细胞仪,使用FL1通道监测荧光强度(FL2通道用于碘化丙锭染色)。

6.2用于荧光显微镜和荧光酶标仪。将100μL细胞悬浮液置于96孔黑壁/微量滴定板透明底部的每个孔中。

注意:如果需要平衡细胞浓度,调整诱导细胞的悬浮体积以接近非诱导细胞群的细胞密度。如果您的细胞治疗不会导致受刺激细胞群数量的显着损失,则此调整步骤是可选的。

6.3使用FITC通道在荧光显微镜下观察细胞(用于碘化丙啶染色的TRITC通道,用于Hoechst染色的DAPI通道)。

6.4使用荧光酶标仪,使用Ex / Em = 490 / 525nm(在515nm处截止)底部读取模式监测荧光强度。

 

参考文献

Helicobacter pylori Secreted Protein HP1286 Triggers Apoptosis in Macrophages via TNF-Independent and ERK MAPK-Dependent Pathways
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: Frontiers in Cellular and Infection Microbiology (2017): 58

Death receptor 3 mediates necroptotic cell death
Authors: Sebastian Bittner, Gertrud Knoll, Martin Ehrenschwender
Journal: Cellular and Molecular Life Sciences (2016): 1–12

Helicobacter pylori protein JHP0290 exhibits proliferative and anti-apoptotic effects in gastric epithelial cells
Authors: Raquel Tavares, Sushil Kumar Pathak
Journal: PloS one (2015): e0124407

 

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产品名称 货号
Cell Meter 活细胞Caspase 1结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20108
Cell Meter 活细胞Caspase 8结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20115
Cell Meter 活细胞Caspase 9结合检测试剂盒 绿色荧光 Cat#20117

Cell Meter 比色法WST-8细胞定量试剂盒-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 比色法WST-8细胞定量试剂盒价格 2823
产品规格

1000 Tests

产品货号

Cell Meter 比色法WST-8细胞定量试剂盒

产品参数
Ex (nm) Em (nm)
分子量 溶剂
存储条件 避免光照, 在零下15度以下保存
产品概述

我们的Cell Meter™检测试剂盒是一套用于监测细胞生存力的工具。有多种参数可用于监测细胞活力。 Cell Meter™比色WST-8细胞定量试剂盒使用水溶性WST-8四唑盐来定量活细胞的数量。水溶性WST-8四唑鎓盐在电子载体1-甲氧基-5-甲基吩嗪鎓硫酸盐存在下进行生物还原后可生成水溶性橙色臜染料。该试剂盒既方便又强大,具有混合读取格式。 WST-8溶液直接添加到测试池中,不需要预先混合组分。 WST-8四唑盐被细胞脱氢酶还原为橙色的甲maz产物,可溶于组织培养基。通过监测460 nm处的吸光度增加,甲maz的产生量与活细胞数量成正比。 WST-8溶液的出色稳定性和极小的细胞毒性使该试剂盒可用于需要长时间孵育(例如24至48小时)的测定。 Cell Meter™比色WST-8细胞定量试剂盒提供了一种灵敏的比色测定法,可用于测定增殖和细胞毒性测定中的活细胞数量。检测灵敏度高于任何其他基于四唑盐的检测方法,例如MTT,XTT或MTS等。

点击查看细胞培养方案

 

适用仪器


吸光度酶标仪  
吸光度: 460 nm
推荐孔板: 透明底板
实验方案

简要概述

  1. 在96孔板中制备细胞(100 µL /孔)
  2. 每空加入10ul WST-8TM溶液
  3. 在37°C孵育1-4小时
  4. 监测OD = 460 nm处的吸光度

如果将WST-8TM溶液保存在4°C并避光,其稳定性可超过一年。 将其存放在<-20°C的温度下以便更长的存储时间。

 

操作步骤

细胞增殖和细胞毒性检测

  1. 在具有透明底部的组织培养微孔板中培养细胞(5000到10,000个细胞/孔板)。
  2. 将测试化合物添加到细胞中,并在37°C,5%CO2的培养箱中孵育,所需的时间根据具体实验而定(例如24、48或96小时)。 对于空白孔(不含细胞的培养基),添加相同量的测试化合物。 对于96孔板,建议的总体积为100 µL,对于384孔板,建议的总体积为50 µL。 注意:应单独评估每种细胞系,以确定增殖或细胞毒性诱导的细胞密度。 对于增殖测定,使用较少的细胞; 对于细胞毒性测定,请使用更多的细胞。
  3. 向每个孔中加入10 µL /孔(96孔板)或5 µL /孔(384孔板)的WST-8TM溶液。
  4. 将板在37°C下孵育1-4小时,避光。 注意:孵育时间可能从30分钟到过夜,具体取决于所用的单个细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。
  5. 用吸光度板酶标仪在OD = 460 nm处监测吸光度的增加。

细胞计数检测

  1. 在具有透明底部的组织培养微孔板中准备细胞培养物。 对于96孔板,建议的总体积为100 µL;对于384孔板,建议的总体积为50 µL。 注意:我们在透明的底部96孔板中使用了连续稀释的HeLa和Jurkat细胞悬浮液进行测定。
  2. 向每个孔中加入10 µL /孔(96孔板)或5 µL /孔(384孔板)的WST-8TM溶液。
  3. 将板在37°C下孵育1-4小时,避光。 注意:孵育时间可能从30分钟到过夜,具体取决于所用的单个细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。
  4. 使用吸光度板读数器在OD = 460 nm处监测吸光度的增加。

 

数据分析 Cell Meter 比色法WST-8细胞定量试剂盒

从空白标准孔获得的读数(Abs(460 nm))用作阴性对照。 从其他标准的读数中减去该值即可得到基线校正值。 然后,绘制标准读数,以获得标准曲线和方程式。 该方程式可用于计算细胞数/孔样品。 我们建议您使用在线线性回归计算器,该计算器可在以下网址找到:https://www.aatbio.com/tools/linear-logarithmic-semi-log-regression-online-calculator

 

参考文献

miR-218 inhibits the proliferation of human glioma cells through downregulation of Yin Yang 1
Authors: Yong Gao, Laisheng Sun, Zicheng Wu, Chengmin Xuan, Junxia Zhang, Yongping You, Xincheng Chen
Journal: Molecular Medicine Reports (2017)

Cell Meter 比色细胞毒性检测试剂盒-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter 比色细胞毒性检测试剂盒价格 11401
产品规格

5000 Tests

产品货号

Cell Meter 比色细胞毒性检测试剂盒

产品参数
Ex (nm) Em (nm)
分子量 溶剂
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

Cell Meter 比色法细胞毒性检测试剂盒是美国AAT Bioquest生产的用于细胞毒性检测的试剂盒,Cell Navigator荧光成像试剂盒是一类荧光成像工具,用来标记亚细胞,细胞器;例如细胞膜、溶酶体、线粒体和细胞核等。Cell Navigator系列细胞器或亚细胞结构标记试剂盒提供全的细胞及相关细胞器荧光标记方案,每种检测方案均能提供蓝色/绿色/红色/橙色等不同荧光检测方法。这种细胞标签为从空间上和时间上研究发生的细胞活动提供了一种十分有效的方法。Cell Meter比色法细胞毒性检测试剂盒 使用可溶于水的四唑染料。在电子载体(PMS)存在的细胞还原性条件下,该染料能产生水溶性的甲瓒。四唑盐经细胞脱氢酶变成橙色的甲瓒产物,它在培养基是可溶的。一定数目甲瓒产物与一定数目活细胞成比例。我们的试剂盒比其他基于四唑细胞毒性检测试剂盒(如MTT、XTT)提供更强有力操作方案。不需要预混合,我们试剂盒四唑盐染料直接加入细胞。此外,我们的试剂盒比其他四唑细胞毒性检测试剂盒(如MTT、XTT)具有更高的灵敏度。能广泛的使用多种设备平台。适应于多种的研究,例如细胞粘附、细胞趋化、多耐药性、细胞生存能力、凋亡和细胞毒性等。该试剂盒具备佳的组分和实验操作流程,适合于增殖或者不增殖的细胞,并能用于悬浮细胞或者贴壁细胞。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商,为您提供优质的Cell Meter 比色法细胞毒性检测试剂盒。 

 

适用仪器


吸光度酶标仪  
吸光度: 570/60 nm
推荐孔板: 黑色透明底板
实验方案

样品实验方案

简要概述

1.用测试化合物(100μL/孔/ 96孔板或50μL/孔/ 384孔板)制备细胞
2.添加1/5体积的分析溶液(组分A)
3.将细胞在37℃,5%CO 2培养箱中孵育1-24小时
4.监测A570nm / A605nm的吸光度比

 

操作步骤

1.在具有黑色壁和透明底部的组织培养微孔板中每孔100至10,000个细胞。 将测试化合物添加到细胞中,并在37℃,5%CO 2培养箱中孵育所需的一段时间(例如24,48或96小时)。 对于空白孔(没有细胞的培养基),加入相应量的化合物缓冲液。 对于96孔板,建议的总体积为100μL,对于384孔板,建议的总体积为50μL。

 

2.对照设置
2.1阳性对照:含有细胞和已知的增殖或细胞毒性诱导剂。

2.2阴性对照:含有细胞但不含有测试化合物。

2.3载体对照:含有细胞和用于递送测试化合物的载体。

2.4非细胞对照:含有不含细胞的生长培养基。

2.5测试化合物对照:含有用于递送测试化合物[Hank’s平衡盐溶液(HBSS)或磷酸盐缓冲盐水(PBS)]和测试化合物的载体对照。 一些测试化合物具有强自发荧光并且可能产生假阳性结果。 注意:对于96孔板,将所有对照的总体积与100μL匹配,对于具有生长培养基的384孔板,将所有对照的总体积与50μL相匹配。

 

3.将测定溶液(组分A)预热至37°C。 在开始实验之前彻底混合。

4.向每个孔中加入20μL(96孔板)或10μL(384孔板)的测定溶液(组分A)。 轻轻摇动平板30秒,混合试剂。

5.将细胞在37°C,5%CO2培养箱中孵育1-24小时,避光。 注意:适当的孵育时间取决于单个细胞类型的代谢率和使用的细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。 不推荐极长的孵育时间,因为指示剂可以转化为无色化合物。

6.用吸光度读板仪在OD比率A570nm / A605nm下监测吸光度的增加。 OD570与OD605的比率用于确定每个孔中的细胞活力。 注意:细胞存活率与OD570增加和OD605减少成正比。

 

数据分析

        从含有细胞的那些孔的值中减去从非细胞对照孔读取的背景吸光度。注意:空白孔的背景吸光度可以根据生长培养基或微量滴定板的来源而变化。

        每个孔中的吸光度读数表示孔中的细胞数。

根据以下公式计算样品和对照的细胞活力百分比:
%细胞活力= 100×(Rsample – Ro)/(Rctrl – Ro)
Rsample是在测试化合物存在下OD570 / OD605的吸光度比。
Rctrl是不存在测试化合物(载体对照)时OD570 / OD605的吸光度比。
Ro是OD570 / OD605的平均背景(非细胞对照)吸光度比。

        从空白标准孔获得的读数(Abs)用作阴性对照。从其他标准的读数中减去该值,以获得基线校正值。然后,绘制标准读数以获得标准曲线和方程。该等式可用于计算细胞数/孔样品。

Cell Meter 比色细胞毒性检测试剂盒

图1.用Cell Meter 比色细胞细胞毒性测定试剂盒测量CHO-K1细胞数量反应。 将1至10个细胞/孔/100μL的CHO-K1细胞在Costar黑壁/透明底96孔板中接种过夜。 将细胞与20μL/孔的测定溶液(组分A)在37℃下孵育3小时。用SpectraMax plus(Molecular Devices)在570nm和605nm下测量吸光度强度。 OD570 / OD605的比例与所示的细胞数成比例。

 

参考文献

Detection of thalidomide embryotoxicity by in vitro embryotoxicity testing based on human iPS cells
Authors: Nobuo Aikawa, Atsushi Kunisato, Kenji Nagao, Hideaki Kusaka, Katsumi Takaba, Kinya Ohgami
Journal: Journal of pharmacological sciences (2014): 201–207

 

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Cell Meter™荧光法细胞毒性检测试剂盒-AAT Bioquest荧光染料

上海金畔生物科技有限公司代理AAT Bioquest荧光染料全线产品,欢迎访问AAT Bioquest荧光染料官网了解更多信息。
Cell Meter™荧光法细胞毒性检测试剂盒价格 2823
产品规格

1000 Tests

产品货号

Cell Meter™荧光法细胞毒性检测试剂盒

产品参数
Ex (nm) 571 Em (nm) 584
分子量 溶剂
存储条件 在零下15度以下保存, 避免光照
产品概述

Cell Meter 荧光法细胞毒性检测试剂盒是美国AAT Bioquest生产的细胞毒性检测试剂盒,Cell Meter检测试剂盒是一类用于检测细胞功能的系列工具,包括细胞活性、细胞毒性、细胞凋亡、细胞膜电位以及细胞周期等方面的指标。每种检测方案均能提供不同荧光颜色的检测方案。这些检测方案为从多角度研究细胞功能活动提供了一种十分有效的方法。有许多不同的参数都可以用来检验细胞活性。Cell Meter荧光法细胞毒性检测试剂盒提供了一种快速、简单、均一的一种荧光分析法来对细胞活性进行检测。本检测法是基于蓝色、非荧光性染料刃天青,接受了来自活细胞线粒体呼吸链中释放的电子时,被还原成粉红色荧光染料(试卤灵);通过对其颜色、荧光的变化的观察来实现检测。产物试卤灵的总量与活细胞数量成直接比例关系。对细胞的增殖性和细胞毒性检测,用本试剂盒比用其他检测法(例如,MTT)具有更高的灵敏度;因为本试剂盒的组分非常适合于低细胞毒性分析,并且能进行长时间保温(例如24~48小时)。本检测法可以便捷地用于96和384微孔板分析中。其高灵敏度(<100 CHO细胞),非放射性和无需洗脱,这些特性使本试剂盒适用于细胞增值性和细胞毒性的高通量扫描筛选,与许多化合物不同的是,它可以用于各种不同的实验平台中。本试剂盒提供所有必需组分和佳检测方案。它适合于增殖型和非增殖型细胞,也可用于悬浮和贴壁细胞。96微孔板中,每孔用试剂20ul,本试剂盒提供的试剂足以进行1000次检测;384微孔板中,每孔加试剂10ul,本试剂盒提供的试剂足以进行2000次检测。金畔生物是AAT Bioquest的中国代理商,为您提供优质的Cell Meter 荧光法细胞毒性检测试剂盒。 

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适用仪器


荧光酶标仪  
Ex: 540 nm
Em: 590 nm
Cutoff: 570 nm
推荐孔板: 黑色透明底板
读取模式: 底读模式
实验方案

样品实验方案

简要概述

1.用测试化合物(100μL/孔/ 96孔板或50μL/孔/ 384孔板)制备细胞
2.添加1/5体积的分析溶液(组分A)
3.将细胞在37℃,5%CO2培养箱中孵育1-24小时
4.监测Ex / Em = 540/590 nm处的荧光强度(底部读取模式)(截止= 570 nm)

 

操作步骤

1.在具有黑色壁和透明底部的组织培养微孔板中每孔100至10,000个细胞。 将测试化合物添加到细胞中,并在37℃,5%CO2培养箱中孵育所需的一段时间(例如24,48或96小时)。 对于空白孔(没有细胞的培养基),加入相同量的化合物缓冲液。 对于96孔板,建议的总体积为100μL,对于384孔板,建议的总体积为50μL。

 

2.对照组设置
2.1阳性对照:含有细胞和已知的增殖或细胞毒性诱导剂。
2.2阴性对照:含有细胞但不含有测试化合物。
2.3载体对照:含有细胞和用于递送测试化合物的载体。
2.4非细胞对照:含有不含细胞的生长培养基。 注意:血清中的LDH会导致背景荧光。
2.5测试化合物对照:含有用于递送测试化合物的载体[Hank’s平衡盐溶液(HBSS)或磷酸盐缓冲盐水(PBS)]和测试化合物。 一些测试化合物具有强自发荧光并且可能产生假阳性结果。 注意:对于96孔板,将所有对照的总体积与100μL匹配,对于具有生长培养基的384孔板,将所有对照的总体积与50μL相匹配。
 
3.将测定溶液(组分A)预热至37°C,并在开始实验前彻底混合。

4.向每个孔中加入20μL/孔(96孔板)或10μL/孔(384孔板)的测定溶液(组分A)。 轻轻摇动平板30秒,混合试剂。

5.将细胞在37°C,5%CO2培养箱中孵育1-24小时,避光。 注意:适当的孵育时间取决于单个细胞类型的代谢率和使用的细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。 由于刃天青可以转化为无色二氢呋喃,因此不推荐极长的孵育时间。

6.在Ex / Em = 540 / 590nm(截止= 570nm)下用荧光酶标仪(底部读取模式)监测荧光强度。

 
数据分析
        从含有细胞的那些孔的值中减去来自非细胞对照孔的背景荧光读数。注意:空白孔的背景荧光可以根据生长培养基或微量滴定板的来源而变化。每个孔中的荧光读数表示该孔中的细胞数。

根据以下公式计算样品和对照的细胞活力百分比:
%细胞活力= 100×(Fsample-Fo)/(Fctrl-Fo)
Fsample是在测试化合物存在下的荧光读数。
Fctrl是不存在测试化合物(载体对照)时的荧光读数。
Fo是平均背景(非细胞对照)荧光强度。

        从空白标准孔获得的读数(RFU)用作阴性对照。从其他标准的读数中减去该值,以获得基线校正值。然后,绘制标准读数以获得标准曲线和方程。该等式可用于计算CHO-K1细胞样品。

Cell Meter™荧光法细胞毒性检测试剂盒
图1.用Cell Meter 荧光细胞细胞毒性测定试剂盒测量CHO-K1细胞数量响应。 将0至10,000细胞/孔/100μL的CHO-K1细胞在Costar黑壁/透明底96孔板中接种过夜。 将细胞与20μL/孔的测定溶液(组分A)在37℃下孵育3小时。 用NOVOstar仪器(BMG Labtech)在Ex / Em = 540 / 590nm(截止值= 570nm)下测量荧光强度。 荧光强度与所示的细胞数呈线性关系(R2 = 0.998)。

 

参考文献

A fluorometric study of relative ocular lens cytosensitivity to multipurpose contact lens solutions using the resazurin assay method
Authors: Oriowo MO.
Journal: Toxicol In Vitro (2006): 1548

A resazurin-based biosensor for organic pollutants
Authors: Tizzard AC, Bergsma JH, Lloyd-Jones G.
Journal: Biosens Bioelectron (2006): 759

Application of the resazurin microtitre assay for detection of multidrug resistance in Mycobacterium tuberculosis in Algiers
Authors: Nateche F, Martin A, Baraka S, Palomino JC, Khaled S, Portaels F.
Journal: J Med Microbiol (2006): 857

Determination of the diagnostic value of the resazurin reduction assay for evaluating boar semen by receiver operating characteristic analysis
Authors: Zrimsek P, Kosec M, Kunc J, Mrkun J.
Journal: Asian J Androl (2006): 343

Development and application of a resazurin-based biomass activity test for activated sludge plant management
Authors: McNicholl BP, McGrath JW, Quinn JP.
Journal: Water Res. (2006)

Development of resazurin microtiter assay for drug sensibility testing of Trypanosoma cruzi epimastigotes
Authors: Rolon M, Vega C, Escario JA, Gomez-Barrio A.
Journal: Parasitol Res (2006): 103

Evaluation of the resazurin microtiter assay for rapid detection of ofloxacin resistance in M. tuberculosis
Authors: Umubyeyi AN, Martin A, Zissis G, Struelens M, Karita E, Portaels F.
Journal: Int J Tuberc Lung Dis (2006): 808

Rapid susceptibility test for Mycobacterium tuberculosis to isoniazid and rifampin with resazurin method in screw-cap tubes
Authors: Coban AY, Cekic Cihan C, Bilgin K, Uzun M, Akgunes A, Cetinkaya E, Durupinar B.
Journal: J Chemother (2006): 140

Comparative evaluation of the nitrate reduction assay, the MTT test, and the resazurin microtitre assay for drug susceptibility testing of clinical isolates of Mycobacterium tuberculosis
Authors: Montoro E, Lemus D, Echemendia M, Martin A, Portaels F, Palomino JC.
Journal: J Antimicrob Chemother (2005): 500

Detection of mitochondrial respiratory dysfunction in circulating lymphocytes using resazurin
Authors: Abu-Amero KK, Bosley TM.
Journal: Arch Pathol Lab Med (2005): 1295

 

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产品名称 货号
Cell Meter 比色法细胞毒性检测试剂盒 Cat#22780

Cell Meter 细胞活性检测试剂盒 红色荧光-AAT Bioquest荧光染料

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Cell Meter 细胞活性检测试剂盒 红色荧光 价格 4245
产品规格

200 Tests

产品货号

Cell Meter 细胞活性检测试剂盒 红色荧光

产品参数
Ex (nm) Em (nm)
分子量 溶剂
存储条件
产品概述

我们的Cell Meter™检测试剂盒是一套用于监测细胞生存力的工具。有多种参数可用于监测细胞活力。该试剂盒使用专有的非荧光染料,进入活细胞后可增强红色荧光。该染料是疏水性化合物,易于渗透完整的活细胞。细胞内酯酶对非荧光底物的水解产生了强烈荧光的亲水产物,该产物被很好地保留在细胞质中。酯酶活性与活细胞的数量成正比,因此与由酯酶催化的荧光底物水解产生的产物的荧光强度直接相关。黑色壁板中生长的细胞可以在不到两个小时的时间内进行染色和定量。该测定比基于四唑鎓盐或基于Alarmar Blue™的测定更稳定。它可以很容易地适用于各种荧光平台中的高通量检测,例如微孔板检测,免疫细胞化学和流式细胞仪。它可用于多种研究,包括细胞粘附,趋化性,多药耐药性,细胞生存力,细胞凋亡和细胞毒性。该套件为所有基本组件提供了优化的细胞标记方案。它适用于增殖和非增殖细胞,可用于悬浮细胞和贴壁细胞。荧光指示剂具有与Cy3 / TRITC滤光片组兼容的光谱特性。

点击查看细胞制备方案

 

适用仪器


荧光酶标仪  
Ex: 540 nm
Em: 590 nm
Cutoff: 570 nm
推荐孔板: 黑色透明底板
读取模式: 底读模式
实验方案

简要概述

  1. 用测试化合物进行细胞准备工作
  2. 去掉培养基
  3. 加入CytoCalcein™Red AM工作溶液(100 µL /孔/ 96孔板或25 µL /孔/ 384孔板)
  4. 室温下孵育30min-1h
  5. 监测Ex / Em = 540/590 nm(截止= 570 nm)的荧光强度(底部读取模式)

 

储备溶液配制
除非另有说明,否则所有未使用的储备溶液应分为一次性使用的等分试样,并在制备后储存在-20°C下。 避免重复冻融循环。
1. CytoCalcein™Red AM储备溶液:
向CytoCalcein™Red AM小瓶(组分A)中加入20 µL DMSO(组分B),并充分混合以制成CytoCalcein™Red AM储备液。 注意:20 µL CytoCalcein™Red AM储备液足以装满一块板。 避光。 为了存放,请将管子紧紧密封。 注意:如果试管密封严密,可将未使用的CytoCalcein™Red储备液分装并在<-20℃下保存1个月。 避免重复冻融循环。

工作溶液配制
将全部内容物(20 µL)的CytoCalcein™Red AM储备溶液添加到10 mL的测定缓冲液(组分C)中,并充分混合以制成CytoCalcein™Red AM工作溶液。 注意:此CytoCalcein™Red AM工作溶液不稳定,请立即使用。 注意:如果这些细胞(例如CHO细胞)含有会导致荧光染料随时间泄漏的有机阴离子转运蛋白,则应准备丙磺舒储备溶液并以孔内工作浓度1加入到缓冲液中 -2.5毫米 分装并保存未使用的丙磺舒储备溶液于≤-20 ℃。

 

操作步骤

  1. 根据需要用测试化合物处理细胞。 注意:添加化合物之前不必洗涤细胞。 但是,如果测试的化合物对血清敏感,则可以在添加化合物之前将生长培养基和血清因子吸掉。 加入100 µL /孔(96孔板)和25 µL /孔(384孔板)的1X Hank盐溶液和20 mM Hepes缓冲液(HHBS)或抽吸后选择的缓冲液。 或者,细胞可以在无血清培养基中生长。
  2. 去除生长培养基
  3. 加入100 µL /孔(96孔板)或25 µL /孔(384孔板)的CytoCalcein™Red AM工作溶液。
  4. 在避光的条件下,在室温或37°C下孵育板30分钟至1小时。 注意:适当的孵育时间取决于所用的单个细胞类型和细胞浓度。 优化每个实验的孵育时间。 对于非贴壁细胞,建议在孵育后以800 rpm的速度离心细胞板2分钟。
  5. 使用荧光酶标仪(底部读取模式)在Ex / Em = 540/590 nm(截止= 570 nm)下监控荧光强度。

 

数据分析

Cell Meter 细胞活性检测试剂盒 红色荧光

从空白标准孔获得的读数(RFU)用作阴性对照。 从其他标准的读数中减去该值即可得到基线校正值。 然后,绘制标准读数,以获得标准曲线和方程式。 此方程式可用于计算HeLa细胞样品。 我们建议您使用在线线性回归计算器,该计算器可在以下网址找到:https://www.aatbio.com/tools/linear-logarithmic-semi-log-regression-online-calculator

 

参考文献

Regulation of pancreatic stellate cell activation by Notch3
Authors: Haiyan Song, Yuxiang Zhang
Journal: BMC cancer (2018): 36

Functional imaging of neuronal activity of auditory cortex by using Cal-520 in anesthetized and awake mice
Authors: Jingcheng Li, Jianxiong Zhang, Meng Wang, Junxia Pan, Xiaowei Chen, Xiang Liao
Journal: Biomedical Optics Express (2017): 2599–2610

NINJ2–A novel regulator of endothelial inflammation and activation
Authors: Jingjing Wang, Jingjing Fa, Pengyun Wang, Xinzhen Jia, Huixin Peng, Jing Chen, Yifan Wang, Chenhui Wang, Qiuyun Chen, Xin Tu
Journal: Cellular Signalling (2017)

Erythropoietin Stimulates Endothelial Progenitor Cells to Induce Endothelialization in an Aneurysm Neck After Coil Embolization by Modulating Vascular Endothelial Growth Factor
Authors: Peixi Liu, Yingjie Zhou, Qingzhu An, Yaying Song, Xi Chen, Guo-Yuan Yang, Wei Zhu
Journal: MEDICINE (2016): 1–8

Flexible Endoscopic Spray Application of Respiratory Epithelial Cells as Platform Technology to Apply Cells in Tubular Organs
Authors: Anja Lena Thiebes, Manuel Armin Reddemann, Johannes Palmer, Reinhold Kneer, Stefan Jockenhoevel, Christian Gabriel Cornelissen
Journal: Tissue Engineering Part C: Methods (2016): 322–331

Influence of hypothermia and subsequent rewarming upon leukocyte-endothelial interactions and expression of Junctional-Adhesion-Molecules A and B
Authors: Nicolai V Bogert, Isabella Werner, Angela Kornberger, Patrick Meybohm, Anton Moritz, Till Keller, Ulrich A Stock, Andres Beiras-Fernandez
Journal: Scientific reports (2016)

Inhibition of ABC transport proteins by oil sands process affected water
Authors: Hattan A Alharbi, David MV Saunders, Ahmed Al-Mousa, Jane Alcorn, Alberto S Pereira, Jonathan W Martin, John P Giesy, Steve B Wiseman
Journal: Aquatic Toxicology (2016): 81–88

Rapid generation of collagen-based microtissues to study cell–matrix interactions
Authors: Marie-Elena Brett, Alexandra L Crampton, David K Wood
Journal: Technology (2016): 1–8

Toxicokinetics and toxicodynamics of chlorpyrifos is altered in embryos of Japanese medaka exposed to oil sands process-affected water: evidence for inhibition of P-glycoprotein
Authors: Hattan A Alharbi, Jane Alcorn, Ahmed Al-Mousa, John P Giesy, Steve B Wiseman
Journal: Journal of Applied Toxicology (2016)

Spraying respiratory epithelial cells to coat tissue-engineered constructs
Authors: Anja Lena Thiebes, Stefanie Albers, Christian Klopsch, Stefan Jockenhoevel, Christian G Cornelissen
Journal: BioResearch open access (2015): 278–287

 

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